Preview

Российский паразитологический журнал

Расширенный поиск

Рецензируемый «Российский паразитологический журнал» издается с 2007 года. «Российский паразитологический журнал» предназначен для научных исследователей в области медицинской, ветеринарной и фитопаразитологии из различных стран мира: России, стран СНГ, Ближнего и Дальнего Зарубежья. Журнал является Международным научно-практическим изданием по фундаментальным и прикладным вопросам паразитологии и единственным в России изданием по ветеринарной паразитологии и фитогельминтологии.

Журнал издается 4 раза в год (ежеквартально) тиражом 500 экз. и является подписным изданием. Подписной индекс в каталоге агентства «Роспечать» 80269.

Журнал зарегистрирован в Министерстве Российской Федерации по делам печати, телерадиовещания и средств массовых коммуникаций 12 января 2007 года (Свидетельство ПИ № ФС77-26864 от 12.01.07 г.). Перерегистрирован по причине изменения названия учредителя 19 октября 2018 года (Свидетельство ПИ № ФС77-74051 от 19.10.18 г.).

«Российский паразитологический журнал» включен в список Russian Science Citation Index (RSCI) на платформе Web of Science, входит в ядро РИНЦ и в Перечень рецензируемых научных изданий ВАК Минобрнауки РФ, в которых должны быть опубликованы основные научные результаты диссертаций на соискание ученой степени кандидата наук, на соискание ученой степени доктора наук. Журнал является членом Комитета по этике научных публикаций, Ассоциации научных редакторов (АНРИ) и CrossRef.

УЧРЕДИТЕЛЬ
ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН

ИЗДАТЕЛЬ
ВНИИП – филиал ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН

РЕДАКЦИЯ ЖУРНАЛА

ВНИИП – филиал ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН

117218, Россия, г. Москва, ул. Б. Черемушкинская, 28

journal@vniigis.ru

   

Текущий выпуск

Том 15, № 3 (2021)
Скачать выпуск PDF

ФАУНА, МОРФОЛОГИЯ И СИСТЕМАТИКА ПАРАЗИТОВ 

11-16 11
Аннотация

Цель исследований – выявление современной паразитологической ситуации у естественно обитающих речных бобров на территории Центрального региона России.

Материалы и методы. Работу проводили в охотничьих хозяйствах и на территории особо охраняемых территорий Центрального региона России. Сбор, учет и консервирование потенциально инвазированного материла от животных проводили в течение 2015–2021 гг. Возраст животных определяли по массе, физиологическому состоянию зубов и внутренних органов грызунов, пол – по наличию гениталий. Животных исследовали согласно методике полного и частичного гельминтологического исследования по К. И. Скрябину.

Результаты и обсуждение. Всего исследовано 41 животное. Выявлено 3 объекта паразитирования на животных в естественных условиях обитания: трематода Stichorchis subtriquetrus, нематода Travassosius rufus и эктопаразит Platypsyllus castoris. Возбудитель стихорхоза, локализованный в толстом отделе кишечника животного, диагностирован у 35 грызунов (85,4%). У евразийского бобра зараженность гельминтом составила 96, у канадского – 68,7%. Нематодоз желудка выявлен у 31 животного (75,6%). Инвазированность T. rufus составила 88% у евразийского бобра, 56,3% у канадского. Инвазированные животные доставлены с территорий Владимирской, Московской, Рязанской, Тульской и Ярославской областей. Бобриная блоха P. castoris обнаружена у 6 животных (14,6%). Зараженность евразийского грызуна составила 8, канадского – 25%. Животные с наличием членистоногих бескрылых насекомых выявлены на территории Московской и Рязанской областей.

17-22 9
Аннотация

Цель исследований: провести идентификацию иксодовых клещей и их патогенов левобережья Центральной Якутии. 

Материалы и методы. Работу выполняли в 2019–2020 гг. на территории левобережья Центральной Якутии. В 2019 г. было собрано 9, в 2020 г. – 27 клещей. Были исследованы лесокустарниковые, степные, луго-полевые, околоводные стации и стации населённых пунктов. Для выяснения фауно-экологических особенностей эктопаразитов на территории использовали стандартные методики отлова. Видовую принадлежность клещей определяли, используя морфологические ключи Н. А. Филипповой, правильность определения подтверждена методом ПЦР. Исследование собранных клещей на наличие возбудителей бабезиоза и клещевого вирусного энцефалита было выполнено с использованием ПЦР-анализа. 

Результаты и обсуждение. В левобережье Центральной Якутии обитает один вид иксодовых клещей: Ixodes persulcatus. На территории Якутии Haemaphysalis cоncinna не обнаруживали. В 2008 г. впервые в Якутии появился природный очаг кровепаразитарной болезни домашних северных оленей в центральной зоне. В последнее время наблюдается повышение численности I. persulcatus. Активность клещей регистрируют со второй декады мая по вторую декаду августа. Основным прокормителем преимагинальных стадий является евражка Spermophilus parryii. При исследовании клещей на наличие возбудителей бабезиоза и клещевого вирусного энцефалита с использованием ПЦР-анализа патогены не были обнаружены.

23-31 10
Аннотация

Цель исследований: изучение зараженности рыб четырех видов кровепаразитами в реках бассейна Нижнего Иртыша. 

Материалы и методы. Работу выполняли в реках бассейна Нижнего Иртыша в 2017–2020 гг. Всего обследовано 390 рыб различного пола и возраста, в том числе 47 экз. плотвы (Rutilus rutilus lacustris, (Pallas)), 41 язя (Leuciscus idus, (Linnaeus, 1758)), 47 щуки (Esox lucius, (Linnaeus, 1758)) и 255 сибирской стерляди (Acipenser ruthenus marsiglii (Brandt, 1833)). Кровь отбирали из хвостовой артерии, исследовали под микроскопом свежую каплю крови и готовили тонкий мазок, высушивали его на воздухе, затем фиксировали в смеси 70%-ного этилового спирта и диэтилового эфира (1 : 1) в течение 30 мин. Зафиксированные мазки высушивали на воздухе при комнатной температуре, окрашивали азур-эозином в разведении 1 : 10 в течение 40 мин. Определяли видовую принадлежность найденных паразитов. Рассчитывали экстенсивность инвазии со стандартной ошибкой среднего.

Результаты и обсуждение. Установлено паразитирование в крови рыб представителей классов Coccidea и Kinetoplastea. У сибирской стерляди зафиксированы Trypanoplasma acipenseris и Haemogregarina acipenseris. Щука инвазирована T. schulmani и H. esoci. В крови язя и плотвы отмечена T. schulmani. Основным переносчиком жгутиконосцев и споровиков, паразитирующих в крови рыб, в бассейне Нижнего Иртыша является Piscicola geometra. Плотва и сибирская стерлядь заражаются паразитическими жгутиконосцами, начиная с возраста 1+. Все обследованные рыбы инвазированы в возрастных группах 2+ – 4+. Гемогрегарины паразитируют у щуки в возрасте 4+ и 5+, у сибирской стерляди – в группах 1+ – 4+ и 6+ – 7+.

32-47 9
Аннотация

Цель исследований: определение видового состава паразитов карповых и окуневых рыб в водохранилищах канала им. Москвы. 

Материалы и методы. В 2019–2020 гг. в весенний, летний и осенний сезоны проведен сбор паразитологического материала у окуневых (судака и окуня) и карповых рыб (леща, густеры, плотвы, красноперки, чехони) в возрасте от двухлеток до семилеток из водохранилищ канала им. Москвы (Икшинского, Пестовского, Пяловского и Клязьминского) по общепринятым в ихтиопаразитологии методам. Для количественной оценки зараженности рыб использовали встречаемость или экстенсивность инвазии, интенсивность инвазии, среднюю амплитуду интенсивности инвазии. Для оценки видового разнообразия паразитов применяли индекс Кабиоша (К). 

Результаты и обсуждение. Приведены результаты паразитологического анализа окуневых и карповых рыб из водохранилищ канала им. Москвы. У рыб обнаружено 34 вида паразитов, относящихся к девяти систематическим группам: Microsporidia, Myxosporea, Monogenea, Cestoda, Trematoda, Nematoda, Acanthocephala, Hirudinea, Crustacea. Наибольшее число видов относится к трематодам, остальные – таксоны (миксо- и микроспоридии, цестоды, нематоды, скребни, пиявки и паразитические рачки) представлены единично. Рассчитан коэффициент видового разнообразия (К) паразитов рыб в водохранилищах, который составляет от 0,335 до 0,575, что свидетельствует о сходстве фауны от 50 до 75%. Наибольшее сходство в фауне паразитов было обнаружено у плотвы (К = 0,168–0,447), наименьшее – у окуня (К = 0,447–1,0). Выявлены доминантные виды, встречающиеся более чем у 20% обследованных рыб и определяющие «ядро» паразитофауны, в которое вошли 4 эпизоотически значимых и один эпидемиологически значимый вид паразитов.

ЭПИЗООТОЛОГИЯ, ЭПИДЕМИОЛОГИЯ И МОНИТОРИНГ ПАРАЗИТАРНЫХ БОЛЕЗНЕЙ 

48-53 14
Аннотация

Цель исследований – проанализировать сезонную динамику численности и структуру гемипопуляций личинок трематод Gynaecotyla adunca у креветок рода Palaemon Weber, 1795 и определить зависимость их заражения метацеркариями G. adunca от размера хозяина и от сезона года в акватории г. Севастополя.

Материалы и методы. Пробы гидробионтов собирали ежемесячно в течение 2012 г. в двух различных биотопах – эстуарии реки Черная и бухте Казачья. Всего обследовано 2445 экз. моллюсков Hydrobia acuta, 200 экз. креветок Palaemon elegans в эстуарии реки Черная и 2248 экз. моллюсков H. acuta и 64 экз. P. adsepsus в акватории бухты Казачьей. Отлов креветок осуществлялся неводом 1 × 0 ,4 м с ячей 6–8 мм. Моллюсков собирали ручным дночерпателем площадью захвата 0,04 м2. Классификацию моллюсков и креветок приводили в соответствии с мировым реестром морских видов World Register of Marine Species. Все ткани моллюсков и креветок обследовали компрессорным методом под бинокуляром МБС-10. Описательная статистика рассчитана с использованием программного пакета Statistica 6 для Windows.

Результаты и обсуждение. Установлено, что для партенит G. adunca характерно несинхронное отрождение дочерних спороцист, содержащих церкарии, а для гемипопуляции метацеркарий G. adunca – перерассеянное распределение, что говорит косвенно о невысокой плотности популяции хозяина и ее постоянной миграции. Проанализирована сезонная динамика численности обнаруженных микрофаллидных личинок трематод. Для метацеркарий G. adunca характерен один пик заражения трематодами в летний период.

54-63 11
Аннотация

Цель исследований – провести регрессионное математическое моделирование популяции мелких млекопитающих – прокормителей иксодовых клещей Калужской области, позволяющее оценить вероятность вспышек зоонозных, трансмиссивных болезней.

Материалы и методы. На протяжении 10 лет (с 2009 по 2019 гг.) проводили многофакторный эксперимент типа 2к в полевых условиях по методике В. В. Калмыкова (2016). Объектом исследования были мышевидные грызуны, наиболее распространенные на территории Калужского региона. Учет численности грызунов проводили стандартными методами с использованием техник В. Н. Шнитникова (1929), П. Б. Юргенсона (1934) и А. Н. Формозова (1937). Использовали общепринятые ловушки Геро. Животных учитывали на всей территории области всех стаций обитаний.

Результаты и обсуждение. Получены регрессионные математические модели количества популяции мышевидных грызунов в зависимости от среднемесячных показателей температуры, уровня осадков и атмосферного давления за год в зоне Нечерноземья на примере Калужской области. Особенность полученной аналитической модели заключается в том, что наибольшее влияние на популяцию мелких млекопитающих оказывает эффект взаимодействия двух факторов: температуры и атмосферного давления. Сила его влияния значительнее, чем влияние каждого из трех исследуемых факторов в отдельности, в частности, сильнее, чем степень влияния одной температуры в 1,02 раза, чем сила влияния одного фактора количества осадков в 2,58 раз, чем сила влияния одного атмосферного давления в 2,72 раз. Расчетная математическая модель дает возможность без существенных материальных, временных затрат рассчитывать численность популяций мышевидных грызунов не только на территории Калужской области, но и в регионах с похожими условиями климата.

64-70 11
Аннотация

Цель исследований: изучение контаминации объектов внешней среды ооцистами криптоспоридий на промышленном свинокомплексе; проведение дезинвазии против экзогенных стадий криптоспоридий с применением кенококса.

Материалы и методы. Исследования проводили на базе промышленного свинокомплекса Череповецкого района Вологодской области в свинарнике-маточнике на 120 голов, разделенном на 2 сектора, а также в свинарнике для поросят-отъемышей и свинарнике-откормочнике на 1500 и 2000 голов соответственно. Для этого брали соскобы с полов станков, проходов, стен кормушек и исследовали их на наличие ооцист криптоспоридий. Затем, в свинарнике-маточнике после перевода поросят в секцию доращивания, проводили дезинвазию. Один сектор обрабатывали кенококсом в дозе из расчета 0,5 л на 1 м2 с экспозицией 2 ч, другой сектор - горячим 4%-ным раствором гидроксида натрия из расчета 1 л на 1 м2 с экспозицией 3 ч. Через одни сутки после обработки повторно изучали контаминацию ооцистами криптоспоридий объектов внешней среды в обоих секторах.

Результаты и обсуждение. Наибольшая контаминация ооцистами криптоспоридий объектов внешней среды (полы и стены станков, кормушки, полы проходов) установлена в свинарнике-маточнике, где в различной степени были контаминированы все обследуемые объекты (19,4%). С увеличением возраста поросят и переводе их в свинарники для отъемышей, а в дальнейшем на доращивание, происходит уменьшение контаминации помещений, в которых содержатся эти возрастные группы животных (10,0 и 2,5% соответственно). При дезинвазии свинарника-маточника, как наиболее контаминированного ооцистами криптоспоридий из обследованных нами свиноводческих помещений, значительный эффект был достигнут при применении кенококса. Раствор гидроксида натрия оказался малоэффективным против ооцист криптоспоридий.

БИОХИМИЯ, БИОТЕХНОЛОГИЯ И ДИАГНОСТИКА 

71-75 14
Аннотация

Цель исследований – провести анализ локализации личинок Trichinella sp. в мышцах животных и оценить методы прижизненной и послеубойной диагностики трихинеллеза у домашних, диких и промысловых животных.

Материалы и методы. В целях предупреждения трихинеллеза у населения и животных широко применяются методы прижизненный и послеубойной диагностики трихинеллеза. Прижизненная диагностика трихинеллеза основана на выявлении специфических антител в сыворотке крови больных животных. Современные иммунологические реакции позволяют выявлять специфические антитела (иммуноглобулины J и M) спустя 10–12 сут после заражения. Наибольшую реальную возможность применения для индивидуального и массового сероэпизоотического обследования свиней и лошадей имеет иммуноферментная реакция (ИФР) с фракционированным антигеном; ИФР является высокочувствительным и специфичным тестом. Ветеринарно-санитарная экспертиза осуществляется методами компрессорной трихинеллоскопии и пептолиза (переваривания мышечной ткани в искусственном желудочном соке). Для компрессорного метода исследования, в частности туш свиней, отбирают 2 пробы по 60 г каждая из ножек диафрагмы. Возможно также исследование проб из жевательных мышц, языка, межреберных, пищевода. Из каждой пробы делают по 12 срезов (всего 24). Более чувствительным и производительным является метод переваривании мышечной ткани с помощью комплекса диагностических устройств и аппаратов типа АВТ. Метод основан на пептолизе измельченный мышечной ткани в технологических реакторах. Диагностика на трихинеллез с помощью указанных аппаратов позволяет автоматизировать и механизировать все процессы, связанные с выделением личинок трихинелл. Основные области применения аппаратов – мясоперерабатывающие предприятия, звероводческие хозяйства, лаборатории ветсанэкспертизы на рынках.

Результаты и обсуждение. Приведены данные о роли ветеринарно-санитарной экспертизы на трихинеллез восприимчивых животных, как основного мероприятия в системе мер профилактики этой инвазии. Анализируются показатели диагностической эффективности, производительности и удобства в работе методов компрессорной трихинеллоскопии и переваривания мышечной ткани в искусственном желудочном соке. Дана информация о локализации личинок трихинелл у различных видов домашних и диких животных, оптимальных местах отбора и объемах образцов мышечной ткани при существующих методах экспертизы на трихинеллез. Для исследования свежих туш на трихинеллез в условиях мясоперерабатывающих предприятий рекомендуется метод пептолиза.

ФАРМАКОЛОГИЯ, ТОКСИКОЛОГИЯ 

76-82 11
Аннотация

Цель исследований: изучение острой пероральной токсичности лекарственного препарата для ветеринарного применения Ивербутан, предназначенного для лечения и профилактики арахноэнтомозов и нематодозов сельскохозяйственных птиц.

Материалы и методы. Исследования проводили на 30 аутбредных беспородных самцах крыс массой тела 210–240 г и 60 мышах массой тела 18–21 г. Животных разделили на опытные и контрольные группы. Препарат вводили однократно без разведения в виде предоставленного раствора с помощью внутрижелудочного зонда. На мышах были испытаны дозы 2000, 4000, 6000, 8000 и 10 000 мг/кг, на крысах – 10 000, 8000, 5000, 4000 мг/кг. Животным контрольных групп вводили питьевую воду. В течение 14 сут после однократной дачи препарата проводили наблюдение за физиологическим состоянием и поведением животных, возможной гибелью, а также проявлением симптомов интоксикации. Контроль массы тела животных опытных и контрольных групп осуществляли в день постановки опыта (до введения препарата), а также на 1, 3, 7, 9 и 14-е сутки.

Результаты и обсуждение. Установлено, что при пероральном введении опытным животным Ивербутан среднесмертельная доза, рассчитанная по методу Кербера, составила 5600 мг/кг массы тела мышей и 7000 мг/кг массы тела крыс (4 класс опасности по ГОСТ 12.1.007-76). Среднесмертельная доза, рассчитанная по методу Миллера и Тейнтера, составила 5292,0±1058,6 (4233,4÷6350,6) мг/кг массы тела мышей и 6463,2±1496,9 (4966,3÷7960,1) мг/кг массы тела крыс (3 класс опасности по ГОСТ 12.1.007-76), что свидетельствует о видовой чувствительности.

ЛЕЧЕНИЕ И ПРОФИЛАКТИКА 

83-92 13
Аннотация

Цель исследований – оценить действие альбендазола в составе супрамолекулярного комплекса с динатриевой солью глизирризиновой кислоты, полученного методом твердофазной механической обработки.

Материалы и методы. Оценку антигельминтного действия комплекса и его влияния на организм хозяина проводили на хомячках, инвазированных Opisthorchis felineus, при одно- и семикратном введении через 45 сут после заражения. Через 21 сутки после этого подсчитывали число гельминтов в печени; проводили морфометрический анализ печени и селезенки, а также биохимическое определение активности ферментов аланинаминотрансферазы и аспартатаминотрансферазы в сыворотке крови животных.

Результаты и обсуждение. Число O. felineus существенно снижалось после семикратного, но не однократного, введения альбендазола (АБЗ) и комплекса АБЗ-Na2ГК (1 : 10). Вводимые вещества не оказывали влияния на прирост массы тела животных и суточное потребление гранул. При этом только в составе комплекса АБЗ нормализовал массу печени и селезенки у инвазированных O. felineus хомячков и снижал активность фермента аланинаминотрансферазы. Следовательно, более длительное введение АБЗ в составе комплекса с динатрия глицирризинатом оказывает не только выраженный антигельминтный эффект, но и в большей степени, чем чистое вещество, улучшает некоторые физиологические показатели хомячков.

93-100 14
Аннотация

Цель исследований: изучить действие триклабендазола на жизнеобеспечивающие органы фасциол – шипики и присоски, отвечающие за устойчивое положение паразита в организме хозяина.

Материалы и методы. Материалом для исследования служили трематоды Fasciola hepatica (Linneus 1758, семейство Fasciolidae Railliet 1895), которые были взяты после действия триклабендазола (фазинекс) (в химическом отношении 5-хлор-6-(2,3-дихлорфенокси)-2-метилтиобензимидазол) на 7-е сутки после дачи препарата в дозе 10 мг/кг ДВ при лечении фасциолеза овец, однократно. Контролем служили F. hepatica от животных, не подвергавшихся лечению. Половозрелые F. hepatica, взятые после лечения триклабендазолом, а также мариты контрольных групп после фиксации обезвоживали в спиртах восходящей концентрации в течение 1–2 сут; проводили через смесь хлороформа и абсолютного спирта (в соотношении 1 : 1); чистый хлороформ в двух порциях по 10–15 мин. пропитывали материал кашицеобразной смесью хлороформа и парафина в термостате при температуре 37 оС в течение 12–18 ч; парафином в термостате при 56 оС в течение 30–45 мин.; заливали в парафин с добавлением воска. Полученные парафиновые блоки раскладывали на серийные срезы толщиной 5–7 мкм, далее окрашивали и изучали в световом микроскопе.

Результаты и обсуждение. Патомикроморфологический анализ шипиков и присосок F. hepatica – органов, вступающих в адгезивный контакт с организмом хозяина, после действия триклабендазола выявил в них деструктивные изменения. После воздействия триклабендазола на фасциол шипики выглядят увеличенными, набухшими, принимают более округлую форму и имеют изменение в цветовой гамме, в большей концентрации воспринимая эозинофильный краситель. Мышечные волокна ротовой и брюшной присосок фасциол после действия триклабендазола также выглядят разбухшими. Мускулатура фаринкса F. hepatica хотя и сохранила свою структуру, но имеет изменения. Она резко утолщена, что чётко видно на поперечных и продольных срезах гельминтов; нейросекреторные клетки разрушены, на их месте выявляются пустоты.

101-106 13
Аннотация

Цель исследований: изучение клинического статуса организма животного, изменений гематологических показателей до применения и после лечения при саркоптоидозах крупного рогатого скота.

Материалы и методы. Опыт проводили на бычках и телочках в возрасте 6–10 мес., средней упитанности, живой массой 100–120 кг. Подопытных животных разделили на три группы: две опытные и одну контрольную по 15 голов в каждой. До опыта и через 7, 14 и 21 сут после обработки акарицидными препаратами у животных всех групп брали соскобы с пораженных участков кожного покрова и кровь для исследования. Животные первой опытной группы были обработаны ивермектином подкожно в область предплечья в дозе из расчета 5 мл на животное, а второй опытной группы – цидектином подкожно в дозе из расчета 5 мл на животное в область предплечья. Животных контрольной группы не обрабатывали. 

Результаты и обсуждение. В процессе проведенных гематологических исследований было установлено снижение количества эритроцитов и гемоглобина при саркоптоидозах, что свидетельствовало о снижении поступления кислорода в организм, а, следовательно, и в органы и ткани. В лейкоцитарной формуле наблюдали заметное снижение числа моноцитов и лимфоцитов.

107-116 12
Аннотация

Цель исследований – охарактеризовать влияние средств специфической иммунокоррекции на выживаемость личинок овечьего овода и иммунный ответ организма хозяина. 

Материалы и методы. На основе водорастворимых белков личинок Oestrus ovis L. и Lucilia serricata Mg. разработаны 3 варианта лабораторных образцов средств специфической иммунокоррекции при эстрозе овец. Исследования проведены на 12 опытных и 3 контрольных группах ягнят текущего года рождения, искусственно инвазированных 80 экз. личинок овечьего овода. За 14 сут до заражения ягнят опытных групп иммунизировали приготовленными препаратами. Препараты вво-дили подкожно в различных дозах (2–6 мл) и повторностях (1–3) или путем однократного интраназального орошения в дозе 10 мл на животное. Оценку эффективности осуществляли за ранний (июль–сентябрь) и летне-весенний (август–апрель) периоды паразитирования. У опытных и контрольных животных определяли уровни специфических антител (JgG), уровень стабильных Е-розеткообразующих клеток (сЕ-РОК) и антигенреактивных (АГ-РОК) Т-лимфоцитов. 

Результаты и обсуждение. Испытанные средства специфической иммунокоррекции на основе соматических белков личинок овечьего овода и овечьей зеленой мухи обладают выраженным протективным действием при эстрозе овец. В опытах под воздействием различных вариантов препаратов в ранний период паразитирования погибло 44,6–99,1%, в летне-весенний период – 22,6–88,1% личинок овечьего овода. Подкожно введенные препараты, в большей степени, чем интраназальное орошение, стимулируют выработку специфических антител и активизируют эффекторную функцию Т-клеточной системы иммунитета.



Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.