Профилактическая эффективность препаратов при пироплазмидозах лошадей в Горном Алтае

Цель исследований – изучить профилактическую эффективность пироплазмоцидных препаратов и выяснить влияние профилактических доз имидокарба дипропионата на выживаемость возбудителей заболевания.
Материалы и методы. 150 головам лошадей внутримышечно вводили бабезан 12% из расчета по действующему веществу имидокарба дипропионата 2,5 мг/кг массы тела и 30 головам двукратно вводили неозидин М в дозе по ДВ 2,5 мл на 100 кг живой массы с интервалом 15 сут. Контрольной группе животных препарат не вводили. Клиническое наблюдение за состоянием животных опытной и контрольной групп осуществляли в течение 72 сут. Перед началом опыта и спустя 14 сут после введения препаратов исследовали пробы крови методом двухраундовой ПЦР в присутствии родоспецифичных праймеров из области гена 18S рРНК на наличие ДНК Babesia spp. / Theileria spp. Установление видовой принадлежности и генотипирование обнаруженных пироплазм проводили посредством секвенирования фрагментов гена 18S рРНК.
Результаты и обсуждение. Из 12 обследованных лошадей в пробах крови у 8 животных (66,7%) обнаружена ДНК пираплазмид, из них 50,0% идентифицированы как Theileria equi и 16,7% как Babesia caballi. Высокий уровень встречаемости ДНК T. equi (свыше 50,0%) свидетельствует об эндемичном течении тейлериоза лошадей. Применение бабезана 12% при ранней химиотерапии лошадей позволяет профилактировать заболеваемость тейлериозом в течение 48 и 59 сут. Двукратная химиотерапия лошадей неозидином М с интервалом 15 сут предотвращает заболеваемость в течение 52 сут. Бабезан 12% в профилактической дозе не оказывает воздействия на выживаемость персестирующих стадий T. equi.

1. Князев С. П., Тимченко А. М. Динамика поголовья и современное состояние ресурсов лошадей в Сибири // Вестник Новосибирского государственного университета. 2016. № 1(38). С. 139-146.

2. Марченко В. А., Рар В. А., Айбыкова Ч. Т. Профилактика пироплазмидозов лошадей горного Алтая // «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями»: сборник научных статей по материалам Международной научной конференции. М., 2021. Вып. 22. С. 323-329. https://doi.org/10.31016/978-5-6046256-1-3.2021.22.323-329.

3. Рар В. А., Ефремова Е. А., Марченко В. А., Тикунов А. Ю., Тикунова Н. В. Молекулярно-генетический анализ возбудителей кровепаразитарных болезней сельскохозяйственных животных на территории Горного Алтая // «Актуальные проблемы сельского хозяйства горных территорий»: материалы V международной научно-практической конференции, посвященной 85-летию Горно-Алтайского НИИСХ. Горно-Алтайск, 2015. С. 119-123.

4. Рар В. А., Марченко В. А., Ефремова Е. А., Сунцова О. В., Лисак О. В., Тикунов А. Ю., Мельцов И. В., Тикунова Н. В. Идентификация и генетическая характеризация этиологического агента пироплазмидоза лошадей на территории Западной и Восточной Сибири // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018. Т. 22. № 2. С. 224-229. https://doi.org/10.18699/VJ18.351.

5. Семенов П. В. Распространение иксодовых клещей и гемоспоридиозы лошадей в Алтайском крае // Сборник научных работ СибНИВИ. 1954. Вып. V. С. 233-260.

6. Христиановский П. И., Белименко В. В. Пироплазмидозы животных на Южном Урале // Российский паразитологический журнал. 2009. № 2. С. 70-74.

7. Bhoora R., Franssen L., Oosthuizen M. C., Guthrie A. J., Zweygarth E., Penzhorn B. L., Jongejan F., Collins N. E. Sequence heterogeneity in the 18S rRNA gene within Theileria equi and Babesia caballi from horses in South Africa. Vet. Parasitol. 2009; 159 (2): 112-120. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2008.10.004.

8. Hong Yin, Jianxun Luo, Guanyuan Liu, Guiquan Guan, Youquan Li, Zhijie Liu, Qingli Liu, Aihong Liu, Junlong Liu, Jifei Yang. Advance on the Piroplasms in China. Iran J Parasitol. 2017; 12 (1): 9.

9. Malekifard F., Tavassoli M., Yakhchali M. Detection of Theileria equi and Babesia caballi in horses and donkeys by microscopic and molecular methods in Urmia suburb, West Azerbaijan province, Iran. Iran J. Parasitol. 2015; 10 (1): 223.

10. Muhammad Jamal Khan Afridi, Abdul Hafeez Mian, Muhammad Saqib et al. Seroprevalence and Risk Factors for Theileria equi Infection in Equines from Khyber Pakhtunkhwa Province, Pakistan. Iran J. Parasitol. 2017; 12 (4): 597-605.

11. Rothschild C. M. Equine piroplasmosis. J. Equine Vet. Sci. 2013; 33: 497–508. https://doi.org/10.1016/j.jevs.2013.03.189.

12. Salim B., Bakheit M. A., Kamau J., Nakamura I., Sugimoto C. Nucleotide sequence heterogeneity in the small subunit ribosomal RNA gene within Theileria equi from horses in Sudan. Parasitol. Res. 2010; 106 (2): 493-498. DOI: 10.1007/s00436-009-1691-7.

13. Scoles G. A., Ueti M. W. Vector ecology of equine piroplasmosis. Annu. Rev. Entomol. 2015; 60: 561-580. https://doi.org/10.1146/annurev-ento010814-021110.

14. Wise L. N., Kappmeyer L. S., Mealey R. H., Knowles D. P. Review of equine piroplasmosis. J. Vet. Intern. Med. 2013; 27 (6): 1334-1346.

15. Zhang Y., Chahan B., Liu S. et al. Epidemiologic studies on Theileria equi infections for grazing horses in Ili of Xinjiang province. Vet. Parasitol. 2017; 244: 111113.