Внутриядерные включения в макрофагах ящерицы Lacerta agilis, экспериментально инвазированной скребнем Corynosoma strumosum

Цель исследований: изучение клеточного ответа неестественного паратенического хозяина и процесса инкапсуляции в нем скребня Corynosoma strumosum в условиях эксперимента для последующего сравнения с механизмом инкапсуляции этого скребня в естественном паратеническом хозяине. Материалы и методы. Опыты проводили на 24 ящерицах Lacerta agilis и одной L. viridis. От 13 из них были получены 17 инкапсулированных скребней. Скребней вместе с капсулами препарировали для электронно-микроскопических исследований по стандартной методике и изучали в световом (на полутонких срезах) и электронных (на ультратонких срезах) микроскопах. Полутонкие срезы окрашивали метиленовым синим или смесью метиленового синего и кристаллического фиолетового. Ультратонкие срезы контрастировали цитратом свинца. С применением светового микроскопа были исследованы все капсулы, полученные в эксперименте, электронно-микроскопически - капсулы в возрасте 1,5 и 10 сут. Результаты и обсуждение. Все исследованные скребни, включая и обнаруженных через полтора суток после начала эксперимента, были заключены в толстую клеточную капсулу, в составе которой преобладали одноядерные или мультиядерные макрофаги. Примерно в половине ядер были обнаружены одиночные электронно-плотные включения правильной округлой формы, окруженные гало из умеренно-плотного материала. Природа включений осталась неизвестной. При интерпретации результатов описанной находки необходимо учитывать: 1) наличие этих включений в ядрах только макрофагов; 2) строго одиночное расположение их в ядрах; 3) строго сферическая форма; 4) очень высокая электронная плотность образующего их материала, превышающая плотность ядрышка и хроматина; 5) наличие гало; 6) отсутствие видимых признаков патологии ядер и цитоплазмы клеток, в которых эти включения обнаружены. Предполагается, что их появление связано с повышенной активностью макрофагов ящерицы, вызванной инвазией паразитическим червем.

акантоцефалы, скребни, Corynosoma strumosum, Lacerta agilis, капсула, макрофаги, внутриядерные включения, acanthocephalan, Corynosoma strumosum, Lacerta agilis, capsule, macrophage, intranuclear inclusions

1. Петроченко В. И. Акантоцефалы домашних и диких животных. Т. 1. М.: АН СССР, 1956. 436 с

2. Шарпило В. П., Саламатин Р. В. Паратенический паразитизм: становление и развитие концепции. Киев: ЛОГОС, 2005. 240 с

3. Скоробрехова Е. М., Никишин В. П. Зависимость строения капсулы, окружающей скребня Corynosoma strumosum, от видовой принадлежности естественного паратенического хозяина // Известия РАН. Серия биологическая. 2013. № 6. С. 696-712. DOI: 10.7868/S0002332913050160

4. Arneodo J. D., Bressan A., Lherminier J., Michel J., Boudon-Padieu E. Ultrastructural detection of an unusual intranuclear bacterium in Pentastiridius leporinus (Hemiptera: Cixiidae). J. Invert. Pathol., 2008, vol. 97, pp. 310-313. DOI:10.1016/ j.jip.2007.09.009

5. Atkinson C. T., Ayala S. C. Isospora manchacensis n. sp., an intranuclear coccidian from the Louisiana ground skink, Scincella lateralis (Say, 1823) (Lacertilia: Scincidae). J. Parasitol., 1987, vol. 73, pp. 817-823

6. Bouteille M., Kalifat S. R., Delarue J. Ultrastructural variations of nuclear bodies in human diseases. J. Ultrastr. Res., 1967, vol. 19, pp. 474-486

7. Dumont A., Robert A. Ultrastructure of complex nuclear bodies produced experimentally in hamster peritoneal macrophages. J. Ultrastr. Res., 1971, vol. 36, pp. 483-492

8. Garner M. M., Gardiner C. H., Wellehan J. F. X., Johnson A. J., McNamara T., Linn M., Terrell S. P., Childress A., Jacobson E. R. Intranuclear coccidiosis in tortoises: nine cases. Vet. Pathol., 2006, vol. 43, pp. 311-320

9. Henry K., Petts V. Nuclear bodies in human thymus. J. Ultrastr. Res., 1969, vol. 27, pp. 330-343

10. Herbaut C., Petavy A.-F., Deblock S., Gabrion D. Nuclear inclusions in rostellar cells of Echinococcus multilocularis (Cestoda). Parasitol. Res., 1988, vol. 74, pp. 399-402

11. Hulinska D., Fedoseenko V.M. Studies on the fine structure of the rostellar hooks of Multiceps endothoracicus during the ultimate phase of their formation. Folia parasitol., 1977, vol. 24, pp. 347-351

12. Martinez A. J., Ohya T., Jabbour J. T., Duenas D. l. Subacute sclerosing panencephalitis (SSPE) reappraisal of nuclear, cytoplasmic and axonal inclusions. Ultrastructural study of eight cases. Acta neuropath., 1974, vol. 28, pp. 1-13

13. Schmidt G. Development and life cycles / Biology of the Acanthocephala / Eds. Crompton D., Nickol B. - Cambridge: Cambridge University Press, 2005, pp. 273-305

14. Skorobrechova E. M., Nikishin V. P. Structure of capsule surrounding acanthocephalans Corynosoma strumosum in paratenic hosts of three species. Parasitol. Res., 2011, vol. 108, pp. 467-475. DOI: 10.1007/s00436-010-2088-3

15. Skorobrechova E., Nikishin V., Lisitsyna O. Structure of capsule around acanthocephalan Corynosoma strumosum from uncommon paratenic hosts - lizards of two species. Parasitol. Res., 2012, vol. 110, pp. 459-467. DOI 10.1007/ s00436-011-2512-3

16. Thompson R. C. A., Dunsmore J. D., Hayton A. R. Echinococcus granulosus: secretory activity of the rostellum of the adult cestode in the dog. Exp. Parasitol., 1979, vol. 48, pp. 144-163

17. Van Kirk L. S., Hayes S. F., Heinzen R. A. Ultra-structure of Rickettsia rickettsii actin tails and localization of cytosceletal proteins. Infection Immunity. 2000, vol. 68, pp. 4706-4713

18. Vasquez J. J., Ortuno G., Cervos-Navarro J. An ultrastructural study of spheroidal nuclear bodies found in gliomas. Vet. Pathol., 1970, vol. 43, pp. 311-320