ИССЛЕДОВАНИЕ ЗАВИСИМОСТИ КРИСТАЛЛОГЕННОЙ АКТИВНОСТИ БИОСРЕДЫ ОТ ИНТЕНСИВНОСТИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ ИНВАЗИИ Trichinella spiralis
Аннотация
Изучена дегидратационная структуризация мочи крыс при экспериментальном заражении их Trichinella spiralis. Кристаллогенную и инициирующую активность мочи животных исследовали методом тезиокристаллоскопии через 4 недели после заражения. Исследование кристаллогенных свойств и инициаторного потенциала биологических жидкостей организма может стать индикатором наличия и глубины метаболических сдвигов, вызванных гельминтами.
Об авторах
А. К. Мартусевич
Нижегородский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии
Россия
Россия
кандидат медицинских наук, Нижегородский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии
О. Б. Жданова
Кировская государственная медицинская академия
Россия
Россия
доктор биологических наук, Кировская государственная медицинская академия
Список литературы
1. Астафьев Б.А., Яроцкий Л.С., Лебедева М.Н. Экспериментальные модели паразитозов в биологии и медицине / Под ред. И.В. Тарасевича. – М.: Наука, 1989. – 278 с.
2. Ашихмин С.П., Жданова О.Б., Масленникова О.В. и др. Перспективы применения кристаллографических методов диагностики альвеококкоза в Кировской области // Рос. паразитол. журнал. – 2011. – № 1. – С. 94–99.
3. Константинова Т.H., Беляев А.Е. Трихинеллез. – М.: РМАПО, 1999. – 28 с.
4. Мартусевич А.К. и др. Физиология и патология кристаллостаза: общая парадигма и перспективы изучения // Вестн. Нижегород. ун-та. – 2010. – №1. – С. 135–139.
5. Мартусевич А.К., Жданова О.Б. Особенности свободного кристаллогенеза мочи здоровых и зараженных гельминтами грызунов // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. – 2007. – Т. 45. – С. 153–163.
6. Мартусевич А.К., Жданова О.Б. Информативность исследования кристаллообразования при зоонозах на модели животных // Изв. высших учеб-ных заведений. Поволжский регион. – 2006. – № 1. – С. 30–38.
7. Михайлицын Ф.С., Лебедева М.Н., Веретенникова Н.Л. и др. Активность отечественного антигельминтика трихлофена на моделях гельминтов человека // Мед. паразитол. и паразит. бол. – 2004. – № 1. – С. 44–48.
8. Репина Е.А., Коваленко Ф.П., Кухалева И.В. Метод прижизненной диагностики экспериментального трихинеллеза // Мед. паразитол. и паразит. бол. – 2009. – № 1. – С. 45–48.
9. Трухачев В.И., Толоконников В.П., Лысенко И.О. Научные основы экологической паразитологии. – Ставрополь: АГРУС, 2005. – 300 с.
10. Толстой В.А. Действие вермокса на процессы перекисного окисления липидов у крыс при экспериментальном трихинеллезе // Тр. VII Междунар. науч.-практ. конф. «Современные аспекты патогенеза, клиники, диагностики, лечения и профилактики протозоозов, гельминтозов и арахноэнтомозов человека, животных и растений. – Витебск: ВГМУ, 2010. – С. 145–148.
11. Appleton J.A., Romaris F. A pivotal role for glycans at the interface between Trichinella spiralis and its host // Vet. Parasitol. – 2001. – V. 101, № 3–4. – P. 249–260.
12. Bruschi F., Chiumiento L. Immunomodulation in trichinellosis: does Trichinella really escape the host immune system? // Endocr. Metab. Immune Disord. Drug. Targets. – 2012. – V. 12, № 1. – P. 4–15.
13. Nava–Castro K., Hernández–Bello R., Muñiz–Hernández S. et al. New method to disaggregate and analyze single isolated helminthes cells using flow cy-tometry: proof of concept // J. Biomed. Biotechnol. – 2011. – V. 2011. – ID257060.
14. Neghina R., Moldovan R., Marincu I. et al. The roots of evil: the amazing history of trichinellosis and Trichinella parasites // Parasitol. Res. – 2012. – V. 110, № 2. – P. 503–508.
15. Pastusiak K. Methods and tools for parasite differentiation within the genus Trichinella // Wiad Parazytol. – 2006. – V. 52, № 3. – P. 165–173.
16. Ren H.J., Cui J., Wang Z.Q., Liu R.D. Normal mouse intestinal epithelial cells as a model for the in vitro invasion of Trichinella spiralis infective larvae // PLoS One. – 2011. – V. 6, № 10. – e27010.
17. Romarís F., Appleton J.A. Invasion of epithelial cells by Trichinella spiralis: in vitro observations // Parasite. – 2001. – V. 8, 2 Suppl. – S. 48–50.
18. Wakelin D., Farias S.E., Bradley J.E. Variation and immunity to intestinal worms // Parasitology. – 2002. – V. 125. – S. 39–50.
19. Wang Z.Q., Li L.Z., Jiang P. et al. Molecular identification and phylogenetic analysis of Trichinella isolates from different provinces in mainland China // Parasitol. Res. – 2012. –V. 110, № 2. – P. 753–757.
20. Wang Z.Q., Wang L., Cui J. Proteomic analysis of Trichinella spiralis proteins in intestinal epithelial cells after culture with their larvae by shotgun LC-MS/MS approach // J. Proteomics. – 2012. – V. 75, № 8. – P. 2375–2383.
21. Yang C.Q., Wei Y.Y., Leng Y.X. et al. Vesicular glutamate transporter-3 contributes to visceral hyperalgesia induced by Trichinella spiralis infection in rats // Dig. Dis. Sci. – 2012. – V. 57, № 4. – P. 865–872.
Рецензия
Для цитирования:
Мартусевич А.К., Жданова О.Б. ИССЛЕДОВАНИЕ ЗАВИСИМОСТИ КРИСТАЛЛОГЕННОЙ АКТИВНОСТИ БИОСРЕДЫ ОТ ИНТЕНСИВНОСТИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ ИНВАЗИИ Trichinella spiralis. Российский паразитологический журнал. 2013;(2):64-71.
For citation:
Martusevich A.K., Zhdanova O.B. Investigation of interaction between biological fluid crystallogenic activity and intensity of experimental infection by Trichinella spiralis. Russian Journal of Parasitology. 2013;(2):64-71. (In Russ.)
Просмотров:
179
Послать статью по эл. почте 