ОБЛАСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ ТЕМПЕРАТУРНЫХ ЕРД-МОДЕЛЕЙ ДИРОФИЛЯРИОЗА

Цель исследования — изучить возможность применения температурной ЕРД-модели для профилактики дирофиляриоза.

Материалы и методы. При математическом моделировании дирофиляриоза использована климатическая HDUs-модель, которая основана на влиянии среднесуточной температуры воздуха на скорость развития личинок дирофилярий в комарах. Для развития личинок до инвазионной стадии необходима сумма в 130 единиц развития дирофилярий (ЕРД), накопленная в срок не более 30 суток при среднесуточной температуре свыше 14 оC. Для расчета использованы ежедневные данные о среднесуточной температуре воздуха для городов Ростов-на-Дону (1996–2012 гг.), В. Новгород (2008–2012 гг.), Анапа и Астрахань (2008–2012 гг.).

Результаты и обсуждение. По результатам температурного моделирования установлено, что ЕРД-модели имеют низкую значимость для прогнозирования заболеваемости собак дирофиляриозом (коэффициент корреляции Пирсона минус 0,45). Модель учитывает только среднесуточную температуру и не учитывает другие факторы, влияющие на показатели заболеваемости. Сроки эпидемического сезона дирофиляриоза в г. Ростове-на-Дону с 1999 по 2012 гг. отличались в зависимости от среднесуточных температур. Так, самая ранняя дата начала сезона передачи дирофиляриоза за этот период приходится на 2012 год — 12 мая, самая поздняя на 2001 год — 29 июня. Определены оптимальные сроки профилактики дирофиляриоза у собак: для гг. Ростова-на-Дону, Анапы, Астрахани дачу микрофилярицидов собакам необходимо продолжать с 15 мая по 4 ноября, в г. Великом Новгороде — с 15 июня по 31 августа. Таким образом, ЕРД-модели дирофиляриоза можно применять для установления сроков эпидемиологического сезона дирофиляриоза и сроков профилактической обработки собак от дирофиляриоза.

1. Аракельян Р.С. Эпидемиолого-эпизоотологические особенности дирофиляриоза на территории Астраханской области: автореф. дис. … канд. мед. наук. — М., 2007. — 25 с.

2. Нагорный С.А., Криворотова Е.Ю. Роль служебных собак в распространении дирофиляриоза // «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями»: матер. докл. науч. конф. Всерос. о-ва гельминтол. РАН. — М., 2012. — Вып. 13. — С. 266–269.

3. Chua T.H. Modelling the effect of temperature change on the extrinsic incubation period and reproductive number of Plasmodium falciparum in Malaysia. Trop. Biomed., 2012, Vol. 29, Nо 1, pp. 121–128.

4. Cuervo P.F., Fantozzi M.C., Di Cataldo S. Analysis of climate and extrinsic incubation of Dirofilaria immitis in southern South America. Geospat. Health, 2013, Vol. 8, No 1, pp. 175–181.

5. Ermakova L.A. Nagorny S.A., Krivorotova E.Y., Pshenichnaya N.Y. Comments in response to the authors of «Human dirofilariasis due to Dirofilaria repens in the Russian Federation–remarks concerning epidemiology». Int. J. Inf. Dis., 2014. Mode of access: http://dx.doi.org/10.1016/ j.ijid.2014.04.024. — 24.06.2014.

6. Fischer D., Thomas S.M., Suk J.E. et al. Climate change effects on Chikungunya transmission in Europe: geospatial analysis of vector’s climatic suitability and virus’ temperature requirements. Int. J. Health Geogr., 2013, Vol. 12. — Article 51.

7. Fortin J.F., Slocombe J.O.D. Temperature requirements for the development of Dirofilaria immitis in Aedes triseriatus and Ae. vexans. Mosq. News, 1981, Vol. 41, pp. 625–633.

8. Genchi C., Rinaldi L., Mortarino M. et al. Climate and Dirofilaria infection in Europe. Vet. Parasitol., 2009, Vol. 163, No 4, pp. 286–292.

9. Knight D.H., Lok J.B. Seasonality of heartworm infection and implications for chemoprophylaxis. Clin. Tech. Small. Anim. Pract., 1998, Vol. 13, No 2, pp. 77–82.