Селективная терапия стронгилидозов лошадей: результаты двухлетнего мониторинга

Цель исследований – оценить применимость и эффективность селективной антигельминтной терапии стронгилидозов пищеварительного тракта у лошадей на основе двухлетнего мониторинга в условиях одного конноспортивного хозяйства с использованием принципа отбора «верхние 20%» по числу яиц гельминтов.

Материалы и методы. Продольное наблюдательное исследование проведено на 32 лошадях в течение 24 мес. С интервалом около 4 мес. выполняли количественную овоскопию для определения среднего числа яиц стронгилид в 1 г фекалий (ЧЯГ). К дегельминтизации ивермектином (0,2 мг/кг) включали верхние 20% животных по величине ЧЯГ в каждом цикле (с учётом равных значений на границе). Оценивали динамику ЧЯГ, вклад целевой группы в общее число выделяемых яиц, экстенсэффективность (ЭЭ, %) на 14-е сутки после обработки и статистическую значимость изменений (критерий Фридмана, Вилкоксона, бутстреп-анализ).

Результаты и обсуждение. Распределение ЧЯГ носило выраженно агрегированный характер: около 20% лошадей стабильно формировали в среднем 50,3% (95% ДИ: 47,1–57,2%) суммарного числа выделяемых всеми животными яиц стронгилид (Р < 0,05). Медиана ЧЯГ снизилась с 82,5 до 28 яиц/г за период наблюдения (Р < 0,05). ЭЭ ивермектина составила 100% (95% ДИ: 91,6–100%) во всех 42 случаях дегельминтизации. Применение селективной схемы позволило сократить число обработок на 78,1% по сравнению с традиционной поголовной дегельминтизацией, сохраняя низкую паразитарную нагрузку. Полученные данные подтверждают эпизоотологическую и экономическую целесообразность селективной терапии в хозяйствах со стойлово-выгульным содержанием при условии регулярного мониторинга показателя ЧЯГ и могут служить основой для разработки адаптированных протоколов контроля стронгилидозов у лошадей.

1. Дёмкина О. В. Стратегии борьбы с гельминтами лошадей на Дальнем Востоке России: пилотное исследование // Ветеринарная патология. 2025. 24 (2): 7-18. https://doi.org/10.23947/2949-4826-2025-24-2-7-18

2. Дёмкина О. В. Эффективность фенбендазола при паразитировании циатостомин в Амурской области // «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями»: сборник научных статей по материалам международной научной конференции. 2024. Вып. 25. С. 114- 118. https://doi.org/10.31016/978-5-6050437-8-2.2024.25.114-118

3. Панова О. А., Архипов И. А., Баранова М. В., Хрусталев А. В. Проблема антигельминтной резистентности в коневодстве // Российский паразитологический журнал. 2022. Т. 16. № 2. С. 230–242. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2022-16-2-230-242

4. Панова О. А., Курносова О. П., Хрусталев А. В., Арисов М. В. Методы копрологической диагностики паразитозов животных // Российский паразитологический журнал. 2023. Т. 17. № 3. С. 365–377. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2023-17-3-365-377

5. Abbas G., Nielsen M. K., E-Hage C., Ghafar A., Beveridge I., Bauquier J., Beasley A., Wilkes E. J., Carrigan P., Cudmore L., Jacobson C., Hughes K. J., Jabbar A. Recent advances in intestinal helminth parasites of horses in the Asia-Pacific region: Current trends, challenges and future directions // International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance. 2025; 29: 100622. https://doi.org/10.1016/j.ijpddr.2025.100622

6. Alm Y. H., Osterman-Lind E., Martin F., Lindfors R., Roepstorff N., Hedenström U., Fredriksson I., Halvarsson P., Tydén E. Retained efficacy of ivermectin against cyathostomins in Swedish horse establishments practicing selective anthelmintic treatment // Veterinary Parasitology. 2023; 322: 110007. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2023.110007

7. Beasley A., Abbas G., Hughes K., El-Hage C., Jacobson C., Bauquier J., Wilkes E., Carrigan P., Cudmore L., Hurley J., Beveridge I., Nielsen M., Jabbar A. Australian guidelines for equine internal parasite management // Australian Veterinary Journal. 2025; 103 (4): 151-158. https://doi.org/10.1111/avj.13424

8. Cooper L. G., Benard B. P., Nielsen M. K., Caffe G., Arroyo F., Anziani O.S. First report of ivermectin resistance in cyathostomins (small strongyles) of horses in Argentina // Veterinary Parasitology Regional Studies and Reports. 2024; 52: 101046. https://doi.org/10.1016/j.vprsr.2024.101046

9. Döberl J., Li Z., Furrer R., Jäger M. Treatment efficacy of pyrantel, fenbendazole and macrocyclic lactones in equine strongyles in Germany using FECRT and the model eggCounts // Journal of Equine Veterinary Science. 2025; 155: 105715. https://doi.org/10.1016/j.jevs.2025.105715

10. Elghryani N., Lawlor A., McOwan T., de Waal T. Unravelling the Effectiveness of Anthelmintic Treatments on Equine Strongyles on Irish Farms // Animals. 2024; 14 (13): 1958. https://doi.org/10.3390/ani14131958

11. Grimwood K., Lancaster B., Handel I. Factors Affecting Weigh Tape Reading in the Measurement of Equine Body Weight // Animals (Basel). 2023; 13 (8): 1330. https://doi.org/10.3390/ani13081330

12. Gómez-Cabrera K., Salas-Romero J., Sifontes J. A., de la Torre Cánova R., Salas J. E., Nielsen M. K. Feasibility of selective anthelmintic therapy to horses in tropical conditions: the Cuban scenario // Tropical Animal Health and Production. 2021; 53 (6): 545. https://doi.org/10.1007/s11250-021-02966-y

13. Hamad M. H., Islam S. I., Jitsamai W., Chinkangsadarn T., Naraporn D., Ouisuwan S., Taweethavonsawat P. Patterns of Equine Small Strongyle Species Infection after Ivermectin Intervention in Thailand: Egg Reappearance Period and Nemabiome Metabarcoding Approach // Animals. 2024; 14 (4): 574. https://doi.org/10.3390/ani14040574

14. Johnson A. C. B., Biddle A. S. The Use of Molecular Profiling to Track Equine Reinfection Rates of Cyathostomin Species Following Anthelmintic Administration // Animals. 2021;11 (5): 1345. https://doi.org/10.3390/ani11051345

15. Lüthin S., Zollinger A., Basso W., Bisig M., Caspari N., Eng V., Frey C., Grimm F., Igel P., Lüthi S., Regli W., Roelfstra L., Rosskopf M., Steiner B., Stöckli M., Waidyasekera D., Waldmeier P., Schnyder M., Torgerson P., Hertzberg H. Strongyle faecal egg counts in Swiss horses: A retrospective analysis after the introduction of a selective treatment strategy // Veterinary Parasitology. 2023; 323: 110027. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2023.110027

16. Mair T. Equine worming protocols: tackling the increasing problem of anthelmintic resistance // UK-Vet Equine. 2024; 8 (3): 106-112. https://doi.org/10.12968/ukve.2024.8.3.106

17. Matthews J. B., Peczak N., Lightbody K. L. The Use of Innovative Diagnostics to Inform Sustainable Control of Equine Helminth Infections // Pathogens. 2023; 12 (10): 1233. https://doi.org/10.3390/pathogens12101233

18. Neves R. B., Leme D. P., Bessa F. J., Barros G. P. D., Bricarello P. A. Pre-established anthelmintic protocols in horses: low efficacy and unnecessary treatments highlight the need for strategic deworming // Animal Production Science. 2023; 63 (12): 1226-1235. https://doi.org/10.1071/an22223

19. Nielsen M. K., Pyatt A., Perrett J., Tydén E., van Doorn D., Pihl T. H., Schmidt J. S., von Samson-Himmelstjerna G., Beasley A., Abbas G., Jabbar A. Global equine parasite control guidelines: Consensus or confusion? // International Journal for Parasitology. Drugs and Drug Resistant. 2025; 28: 100600. https://doi.org/10.1016/j.ijpddr.2025.100600

20. Nielsen M. K., Bartholdy I. D., Kristensen K. S., Borrye J. C., Meilvang K. S. S., Rendtorff C. E. K., Hjortflod M. D., Fuglbjerg V., Karlsson M., Petersen H. H., Toft K., Thamsborg S. M., Pihl T. H. Ivermectin performance against equine strongylids: Efficacy, egg reappearance periods, and fecal egg counting method comparison // Veterinary Parasitology. 2025; 336: 110465. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2025.110465

21. Osterman-Lind E., Holmberg M., Grandi G. Selective Anthelmintic Treatment in Horses in Sweden Based on Coprological Analyses: Ten-Year Results // Animals (Basel). 2023; 13 (17): 2741. https://doi.org/10.3390/ani13172741

22. Scare J. A., Leathwick D. M., Sauermann C. W., Lyons E. T., Steuer A. E., Jones B. A., Clark M., Nielsen M. K. Dealing with double trouble: Combination deworming against double-drug resistant cyathostomins. International Journal for Parasitology // Drugs and Drug resistant. 2020; 12: 28-34. https://doi.org/10.1016/j.ijpddr.2019.12.002

23. Virtanen P., Gommers R., Oliphant T. E., Haberland M., Reddy T., Cournapeau D., Burovski E., Peterson P., Weckesser W., Bright J., van der Walt S. J., Brett M., Wilson J., Millman K. J., Mayorov N., Nelson A. R. J., Jones E., Kern R., Larson E., Carey C. J., Polat İ., Feng Y., Moore E. W., Vander-Plas J., Laxalde D., Perktold J., Cimrman R., Henriksen I., Quintero E. A., Harris C. R., Archibald A. M., Ribeiro A. H., Pedregosa F., van Mulbregt P. SciPy 1.0: fundamental algorithms for scientific computing in Python // Nature Methods. 2020; 17: 261-272. https://doi.org/10.1038/s41592-019-0686-2