Изучение паразитозов у лабораторных мышей и крыс в вивариях разных типов

Цель работы – исследовать паразитофауну лабораторных крыс и мышей в вивариях SPF-статуса и открытого типа содержания и сравнить зараженность в зависимости от типа содержания в рамках каждого из видов проб.

Материалы и методы. Исследования проводили прижизненными методами диагностики (метод флотации и скотчтест), материалом для которых служили пробы фекалий от лабораторных грызунов и пробы подстилки. Обследовали 10% поголовья вивариев и всех вновь прибывших мышей и крыс на карантине. От мышей чистых линий было исследовано 54 индивидуальные пробы, а также 24 пробы подстилки. У лабораторных крыс всего было отобрано 234 пробы: 93 индивидуальных, 55 объединённых, 17 проб опилок; 69 проб исследованы скотч-тестом.

Результаты и обсуждение. У 26% лабораторных мышей вивария SPF-статуса были обнаружены простейшие: Giardia muris (11,1%) и Trichomonas sp. (20,4%). У мышей в вивариях открытого типа содержания зарегистрированы нематоды Aspiculuris tetraptera (51,0%) и Syphacia obvelata (20,6%), цестода Rodentolepis nana (12,0%). У лабораторных крыс в вивариях открытого типа содержания были выявлены нематоды Syphacia muris (до 60,9%), A. tetraptera (5,4%), Trichosomoides crassicauda (1,8%), цестода R. nana (27,3%), простейшие Eimeria sp. (7,2%) и Giardia sp. (9,0%). Сравнение зараженности индивидуальных и объединенных проб фекалий мышей показало статистически значимые отличия как в целом по всем паразитам, так и по отдельным видам. Попарные сравнения зараженности показали, что объединенная проба статистически значимо чаще выявляет R. nana по сравнению с индивидуальной пробой (27,3 против 5,4%, Р < 0,001). Сравнение зараженности в зависимости от типа содержания крыс в рамках каждого из видов проб не выявило статистически значимых отличий.

1. Акбаев М. Ш., Водянов А. А., Косминков Н. Е. и др. Паразитология и инвазионные болезни животных. М.: Колос, 1998. 743 с.

2. Гайдай Е. А., Гайдай Д. С. Генетическое разнообразие экспериментальных мышей и крыс: история возникновения, способы получения и контроля // Лабораторные животные для научных исследований. 2019. № 4. https://doi.org/10.29296/2618723X-2019-04-09

3. Климова Е. С., Бабинцева Т. В. Паразитофауна лабораторных грызунов // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. 2019. Т. 240. №. 4. С. 105-109. https://doi.org/10.31588/2413-4201-1883-240-4-105-109.

4. Шемякова С. А., Неклюдова Н. М. Паразитофауна лабораторных мышей в условиях вивария онкологического центра РАМН и совершенствование мер борьбы с сифациозом // Вопросы ветеринарии и ветеринарной биологии. 2006. С. 128-133.

5. Baker D. G. Flynn's Parasites of Laboratory Animals: Second Edition. 2008; https://doi.org/10.1002/9780470344552

6. Brown L. D., Cai T. T., DasGupta A. Interval estimation for a binomial proportion. Statistical science. 2001; 16 (2): 101-133. https://doi.org/10.1080/00949650701749356

7. Li J., Lang P., Huang M., Jing B., Karim M. R., Chao L., Wang Z., Lv Y., Li J., Qi M. Molecular characterization of Cryptosporidium spp. and Giardia duodenalis in experimental rats in China. Parasitology international. 2020; 77. 102127. https://doi.org/10.1016/j.parint.2020.102127

8. Zenner L., Regnault J. P. A retrospective study of the microbiological and parasitological status of laboratory rodents in France. Journal of experimental animal science. 2000; 40 (4): 211-222. https://doi.org/10.1016/s0939-8600(00)80013-9

9. Carriquiriborde M., Milocco S., Laborde J. M., Gentil F., Maschi F., Principi G., Rogers E., Cagliada M. D. P., Ayala M. A., Carbone C. Microbiological contaminations of laboratory mice and rats in conventional facilities in Argentina. Revista Argentina de Microbiología. 2020; 52 (2): 96-100. https://doi.org/10.1016/j.ram.2019.05.003