Визуальная и молекулярно-серологическая диагностика саркоцистоза крупного рогатого скота

Цель исследования – дать сравнительную оценку эффективности разных методов диагностики саркоцистоза крупного рогатого скота.
Материалы и методы. Исследовали 78 туш крупного рогатого скота, используя методы и правила ветеринарно-санитарной экспертизы. Осматривали мускулатуру пищевода и других частей туши, а также селезенку, легкие, печень, почки. Использовали компрессорный метод исследования. Всего на тканевый саркоцистоз анализировали 156 компрессориумов от 78 туш крупного рогатого скота. Для прижизненной диагностики саркоцистоза крупного рогатого скота использовали молекулярно-серологический метод (ИФА), разработанный на основе принципов определения антител.
Результаты и обсуждение. При использовании двух методов диагностики – визуального осмотра и компрессорно-микроскопического, выявлено 13 саркоцистозных туш из 78, что составляет 16,6%. При исследовании сывороток крови от крупного рогатого скота с помощью ИФА число саркоцистозных животных увеличилось еще на 23 случая. Таким образом, при использовании тестов, основанных на разных принципах, нами обнаружено 36 зараженных саркоцистозом животных из 78 обследованных, что составляет 46%.

1. Гламаздин И. Г., Сысоева Н. Ю., Крюковская Г. М., Ли Е. В. Эффективность иммунодиагностических исследований при тканевых паразитозах свиней // Health, Food & Biotechnology. 2019. №1 (4). С. 11-18.

2. Дроздова Л. И., Кундрюкова У. И. Саркоцистоз крупного рогатого скота // БИО. 2019. № 9 (228). С. 32-33.

3. Полянская О. В., Сивков Г. С. Распространение саркоцистоза крупного рогатого скота в Тюменской области // «Проблемы энтомологии и арахнологии»: сборник научных трудов. Тюмень, 2002. С. 134-136.

4. Cerva L., Cerná Z. Indirect haemagglutination reaction with Sarcocystis dispersa antigen. Folia Parasitol. (Praha). 1982; № 29 (3): 219-225.

5. Cerva L., Gut J. Indirect haemagglutination reaction with antigen of Sarcocystis gigantea (Railliet, 1886) Ashford, 1977. Folia Parasitol. (Praha). 1983; 30 (3): 223-228.

6. Dini F. M., Caffara M., Jacinto J. G. P., Benazzi C., Gentile A., Galuppi R. A Case of Bovine Eosinophilic Myositis (BEM) Associated with Co-Infection by Sarcocystis hominis and Toxoplasma gondii. Animals (Basel). 2023; 13 (2): 311.

7. Gjerde B. Molecular characterisation of Sarcocystis bovifelis, Sarcocystis bovini n. sp., Sarcocystis hirsuta and Sarcocystis cruzi from cattle (Bos taurus) and Sarcocystis sinensis from water buffaloes (Bubalus bubalis). Parasitol. Res. 2016; 115 (4): 1473-1492.

8. Habeeb Y. S. M., Selim M. A., Ali M. S., Mahmoud L. A., Adel Hadi A. M., Shafei A. Serological diagnosis of extraintestinal sarcocystosis. J. Egypt Soc. Parasitol. 1996; 26: 393-400.

9. Lindsay D. S., Dubey J. P. Neosporosis, Toxoplasmosis, and Sarcocystosis in Ruminants: An Update. Vet. Clin. North Amer. Food Anim. Pract. 2020; 36 (1): 205-222.

10. Svobodová V. Use of ELISA for the diagnostics of ovine sarcocystosis. Folia parasitologica. 1991; 38 (4): 303-308.

11. Tenter A. M. Current research on Sarcocystis species of domestic animals. Intern. J. Parasitol. 1995; 25 (11): 1311-1330.

12. Uggla A., Buxton D. Immune responses against Toxoplasma and Sarcocystis infections in ruminants: diagnosis and prospects for vaccination. Rev. Sci. Tech. 1990; 9 (2): 441-462.

13. Vangeel L., Houf K., Chiers K., Vercruysse J., D'Herde K., Ducatelle R. Molecular-based identification of Sarcocystis hominis in Belgian minced beef. J. Food Prot. 2007; 70: 1523-1526.

14. Author links open overlay panelKatie Waine, Paul M. Bartley, Alistair Cox, Reuben Newsome, Ben Strugnell, Frank Katzer

15. Zeng H., Van Damme I., Kabi T. W., Šoba B., Gabriël S. Sarcocystis species in bovine carcasses from a Belgian abattoir: a crosssectional study. Parasit. Vectors. 2021; 14: 271.