Preview

Российский паразитологический журнал

Расширенный поиск

Выявление в кровососущих двукрылых насекомых Тюменской области генетического материала возбудителей вирусных болезней животных

https://doi.org/10.31016/1998-8435-2022-16-4-389-402

Аннотация

Цель исследований – тестирование кровососущих двукрылых насекомых, собранных на территории Тюменской области, на наличие генетического материала вирусов – возбудителей опасных заболеваний сельскохозяйственных животных.
Материалы и методы. В период с мая по октябрь 2021 г. на пастбищах и фермах десяти районов Тюменской области были проведены сборы кровососущих насекомых отряда Diptera, видовая принадлежность которых была установлена по определительным таблицам. В 60 пробах, сформированных из отловленных насекомых в соответствии с таксономической принадлежностью, периодом и местом сбора, оценивали наличие генетического материала провируса лейкоза и вируса нодулярного дерматита крупного рогатого скота (КРС), вируса африканской чумы свиней методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) в режиме реального времени.
Результаты и обсуждение. Собранные для ПЦР-исследования взрослые особи насекомых были представлены кровососущими мухами (сем. Muscidae, род Stomoxys), комарами (сем. Culicidae, род Aedes), мошками (сем. Simuliidae, роды Byssodon и Schoenbaueria), слепнями (сем. Tabanidae, роды Hybomitra, Tabanus и Haematopota), мокрецами (сем. Ceratopogonidae, род Culicoides). В результате ПЦР-тестирования проб на наличие ДНК провируса лейкоза КРС положительными оказались 1 из 13 проб Stomoxys spp. (7,7%) и 1 из 13 проб Hybomitra spp. (7,7%). Выявление ДНК провируса лейкоза КРС в кровососущих насекомых указывает на присутствие данного возбудителя на территории сбора насекомых, а также на возможное их участие в его распространении. Необходимы дальнейшие исследования векторной компетентности Stomoxys spp. и Hybomitra spp. в естественных условиях с учетом природно-климатических особенностей Тюменской области.

Об авторах

К. С. Крутько
Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной энтомологии и арахнологии – филиал Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра Тюменского научного центра Сибирского отделения Российской академии наук (ВНИИВЭА – фил. ТюмНЦ СО РАН)
Россия

Ксения Сергеевна Крутько

625041, г. Тюмень, ул. Институтская, 2



А. Г. Кинарейкина
Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной энтомологии и арахнологии – филиал Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра Тюменского научного центра Сибирского отделения Российской академии наук (ВНИИВЭА – фил. ТюмНЦ СО РАН)
Россия

Кинарейкина Анна Григорьевна

625041, г. Тюмень, ул. Институтская, 2



М. И. Серкова
Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной энтомологии и арахнологии – филиал Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра Тюменского научного центра Сибирского отделения Российской академии наук (ВНИИВЭА – фил. ТюмНЦ СО РАН)
Россия

Серкова Маргарита Игоревна

625041, г. Тюмень, ул. Институтская, 2



Е. А. Силиванова
Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной энтомологии и арахнологии – филиал Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра Тюменского научного центра Сибирского отделения Российской академии наук (ВНИИВЭА – фил. ТюмНЦ СО РАН)
Россия

Силиванова Елена Анатольевна

625041, г. Тюмень, ул. Институтская, 2



О. А. Фёдорова
Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной энтомологии и арахнологии – филиал Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федерального исследовательского центра Тюменского научного центра Сибирского отделения Российской академии наук (ВНИИВЭА – фил. ТюмНЦ СО РАН)
Россия

Фёдорова Ольга Александровна

625041, г. Тюмень, ул. Институтская, 2



Список литературы

1. Аронова Е. В., Сальников Н. И., Цыбанов С. Ж., Луницин А. В., Сарыглар Л. К., Янжиева Д. В., Муруева Г. Б. Исследование мокрецов рода Culicoides как потенциальных переносчиков возбудителей трансмиссивных болезней животных в Республике Бурятия // Ветеринария. 2015. № 7. С. 8-11.

2. Бурова О. А., Блохин А. А., Захарова О. И., Яшин И. В.,Лискова Е. А., Гладкова Н. А. Векторы трансмиссивных вирусных болезней животных // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2018. № 5 (66). С. 4-17.

3. Власов М. Е., Середа А. Д., Балышев В. М. Сохраняемость вируса африканской чумы свиней в осенних жигалках и падальных мухах // Ветеринария. 2019. № 8. С. 22-25. doi: 10.30896/0042-4846.2019.22.8.22-25

4. Домацкий В. Н., Фёдорова О. А., Сибен А. Н. Эпизоотологическое и эпидемиологическое значение кровососущих двукрылых насекомых в условиях Крайнего Севера (обзор) // Российский паразитологический журнал. 2018. Т. 12. № 4. С. 73-76. doi: 10.31016/1998-8435-2018-12-4-73-76

5. Донник И. М., Гулюкин М. И., Бусол В. А., Коваленко Л. В., Коваленко А. М. Лейкоз крупного рогатого скота - диагностика, оздоровление, антропозоонозный потенциал (история вопроса) (Обзор) // Сельскохозяйственная биология. 2021. Т. 56. № 2. С. 230-244.

6. Забережный А. Д., Алипер Т. И., Гребенникова Т. В., Верховский О. А., Sanchez-Vizcaino J. M., Mur L., Непоклонов Е. А., Львов Д. К. Африканская чума свиней в Российской Федерации // Вопросы вирусологии. 2012. Т. 57. № 5. С. 4-10.

7. Мищенко В. А., Петрова О. Н., Караулов А. К., Мищенко А. В. Проблема лейкоза крупного рогатого скота. Владимир: ФГБУ «ВНИИЗЖ», 2018. 38 с.

8. Спрыгин А. В., Федорова О. А., Бабин Ю. Ю., Кононов А. В., Караулов А. К. Мокрецы рода Culicoides (Diptera: Ceratopogonidae) и их роль в распространении блютанга и болезни Шмаллеберга в России // Сельскохозяйственная биология. 2015. Т. 50. № 2. С. 183-197.

9. Фёдорова О. А., Новоженова В. С. Эпизоотическая ситуация по трансмиссивным заболеваниям животных в Тюменской области (2000–2020 гг.). Свидетельство о регистрации базы данных 2021620990, 18.05.2021. Заявка № 2021620845 от 27.04.2021.

10. Чичкин А. Н., Падило Л. П., Салтыков Ю. В., Подшибякин Д. В., Дресвянникова С. Г., Джаилиди Г. А., Федорова В. А. Изучение насекомых отряда двукрылые (Diptera) на наличие генетического материала вируса заразного узелкового дерматита методом ПЦР // Ветеринария. 2020. № 7. С. 24-31

11. Baldacchino F., Desquesnes M., Mihok S., Foil L. D., Duvallet G., Jittapalapong S. Tabanids: Neglected subjects of research, but important vectors of disease agents! Infection, Genetics and Evolution. 2014; 28. 596-615. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2014.03.029

12. Barez P. Y., de Brogniez A., Carpentier A., Gazon H., Gillet N., Gutiérrez G., Hamaidia M., Jacques J. R., Perike S., Neelature Sriramareddy S., Renotte N., Staumont B., Reichert M., Trono K., Willems L. Recent Advances in BLV Research. Viruses. 2015; 7 (11): 6080–6088. https://doi.org/10.3390/v7112929

13. Buxton B. A., Hinkle N. C., Schultz R. D. Role of insects in the transmission of bovine leukosis virus: potential for transmission by stable flies, horn flies, and tabanids. Amer. J. Vet. Res. 1985; 46. 123–126.

14. Corredor-Figueroa A. P., Olaya-Galán N. N., Velandia-Álvarez S., Muñoz M., Salas-Cárdenas S. P., Ibáñez-Pinilla M., Patarroyo M. A., Gutiérrez M. F. Co-Circulation of Bovine Leukemia Virus Haplotypes among Humans, Animals, and Food Products: New Insights of Its Zoonotic Potential. Int. J. Environ. Res. Public Health. 2021; 18 (9): 4883. https://doi.org/10.3390/ijerph18094883

15. Dogan F., Bilge Dagalp S., Dik B., Farzani T. A., Alkan F. Detection of genotype 1 bovine leukemia virus from a C. schultzei pool: Do Culicoides spp. have a role on the transmission of bovine leukemia virus? meegid.2020.104469

16. Fila M., Woźniakowski G. African Swine Fever Virus – The Possible Role of Flies and Other Insects in Virus Transmission. J. Vet. Res. 2020; 64 (1): 1-7. doi: 10.2478/jvetres-2020-0001

17. Foil L. D., Seger C. L., French D. D., Issel C. J., McManus J. M., Ohrberg C. L., Ramsey R. T. Mechanical Transmission of Bovine Leukemia Virus by Horse Flies (Diptera: Tabanidae). Journal of Medical Entomology. 1988; 25 (5): 374–376. https://doi.org/10.1093/jmedent/25.5.374

18. Herm R., Kirik H., Vilem A., Zani L., Forth J. H., Müller A., Michelitsch A., Wernike K., Werner D., Tummeleht L., Kampen H., Viltrop A. No evidence for African swine fever virus DNA in haematophagous arthropods collected at wild boar baiting sites in Estonia. Transbound Emerg Dis. 2021; 68 (5): 2696-2702. https://doi.org/10.1111/tbed.14013

19. Inagaki H., Konnai S., Kaburagi H., Murota H., Takabatake N., Watari K., Okagawa T., Maekawa N., Murata S., Ohashi K. Vector transmission of bovine leukemia virus during summer season in Northern Hokkaido. Japan. J. Vet. Res. 2019; 67 (3): 235-239.

20. Inagaki Y., Kobayashi T., Suda Y., Kusama K., Imakawa K. Genetic variation in Japanese Holstein cattle for EBL development. BMC Vet. Res. 2020; 16. 407. https://doi.org/10.1186/s12917-020-02625-8

21. Issimov A., Kutumbetov L., Orynbayev M. B., Khairullin B., Myrzakhmetova B., Sultankulova K., White P. J. Mechanical Transmission of Lumpy Skin Disease Virus by Stomoxys Spp (Stomoxys Calsitrans, Stomoxys Sitiens, Stomoxys Indica), Diptera: Muscidae. Animals. 2020; 10 (3): 477. https://doi.org/10.3390/ani10030477

22. Kahana-Sutin E., Klement E., Lensky I., Gottlieb Y. High relative abundance of the stable fly Stomoxys calcitrans is associated with lumpy skin disease outbreaks in Israeli dairy farms. Medical and Veterinary Entomology. 2017; 31 (2): 150-160. https://doi.org/10.1111/mve.12217

23. Kohara J., Takeuchi M., Hirano Y., Sakurai Y., Takahashi T. Vector control efficacy of fly nets on preventing bovine leukemia virus transmission. J. Vet. Med. Sci. 2018; 80. 1524-1527. https://doi.org/10.1292/jvms.18-0199

24. Kuczewski A., Orsel K., Barkema H. W., Mason S., Erskine R., van der Meer F. Invited review: Bovine leukemia virus – Transmission, control, and eradication. Journal of Dairy Science. 2021; 104 (6): 6358-6375. https://doi.org/10.3168/jds.2020-18925

25. Limon G., Gamawa A. A., Ahmed A. I., Lyons N. A., Beard P. M. Epidemiological Characteristics and Economic Impact of Lumpy Skin Disease, Sheeppox and Goatpox Among Subsistence Farmers in Northeast Nigeria. Front. Vet. Sci. 2020; 7: 8. doi: 10.3389/fvets.2020.00008

26. Makhahlela N. B., Liebenberg D., van Hamburg H., Taioe M. O., Thankgod O., Ramatla T., Thekisoe O. M. M. Detection of pathogens of veterinary importance harboured by Stomoxys calcitrans in South African feedlots. Scientific African. 2022; 15. e01112. https://doi.org/10.1016/j.sciaf.2022.e01112

27. Mat B., Arikan M. S., Akin A. C., Çevrimli M. B., Yonar H., Tekindal M. A. Determination of production losses related to lumpy skin disease among cattle in Turkey and analysis using SEIR epidemic model. BMC Vet. Res. 2021; 17: 300. https://doi.org/10.1186/s12917-021-02983-x

28. Mellor P. S., Kitching R. P., Wilkinson P. J. Mechanical transmission of capripox virus and African swine fever virus by Stomoxys calcitrans. Research in Veterinary Science. 1987; 43. 109–112. https://doi.org/10.1016/S0034-5288(18)30753-7

29. Nakada S., Fujimoto Y., Kohara J., Adachi Y., Makita K. Estimation of economic loss by carcass weight reduction of Japanese dairy cows due to infection with bovine leukemia virus. Preventive Veterinary Medicine. 2022; 198: 105528. https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2021.105528

30. Nekoei S., Hafshejani T. T., Doosti A., Khamesipour F. Molecular detection of Bovine leukemia virus in peripheral blood of Iranian cattle, camel and sheep. Pol. J. Vet. Sci. 2015; 18. 703–707.

31. Ochiai C., Katagiri Y., Kobayashi S., Naitoh I., Yoneyama S., Tomita K., Dongze L., Hikono H., Murakami K. Development of a microchip electrophoresisbased, high-throughput PCR-RFLP method to type Tax 233 variants of bovine leukemia virus in Japan. Arch. Virol. 2020; 165. 2961–2966. https://doi.org/10.1007/s00705-020-04842-w

32. Olesen A. S., Hansen M. F., Rasmussen T. B., Belsham G. J., Bødker R., Bøtner A. Survival and localization of African swine fever virus in stable flies (Stomoxys calcitrans) after feeding on viremic blood using a membrane feeder. Veterinary Microbiology. 2018; 222. 25-29. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2018.06.010

33. Ooshiro M., Konnai S., Katagiri Y., Afuso M., Arakaki N., Tsuha O., Murata S., Ohashi K. Horizontal transmission of bovine leukemia virus from lymphocytotic cattle, and beneficial effects of insect vector control. Vet. Rec. 2013; 173 (21): 527. doi: 10.1136/vr.101833.

34. Panei C. J., Larsen A. E., Fuentealba N. A., Metz G. E., Echeverría M. G., Galosi C. M., Valera A. R. Study of horn flies as vectors of bovine leukemia virus. Open Vet. J. 2019; 9 (1): 33-37. doi: 10.4314/ovj.v9i1.6.

35. Saegerman C., Bertagnoli S., Meyer G., Ganière J. P., Caufour P., De Clercq K., Jacquiet P., Fournié G., Hautefeuille C., Etore F., Casal J. Risk of introduction of lumpy skin disease in France by the import of vectors in animal trucks. PLOS ONE. 2018; 13 (6): e0198506. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0198506

36. Selim A., Marawan M. A., Ali A. F., Manaa E., AbouelGhaut H. A. Seroprevalence of bovine leukemia virus in cattle, buffalo, and camel in Egypt. Trop. Anim. Health Prod. 2020; 52. 1207–1210.

37. Sohier C., Haegeman A., Mostin L., De Leeuw I., Campe W. V., De Vleeschauwer A., Tuppurainen E., van den Berg T., De Regge N., De Clercq K. Experimental evidence of mechanical lumpy skin disease virus transmission by Stomoxys calcitrans biting flies and Haematopota spp. horseflies. Scientific reports. 2019; 9 (1): 20076. https://doi.org/10.1038/s41598-019-56605-6

38. Sprygin A., Pestova Y., Wallace D. B., Tuppurainen E., Kononov A. V. Transmission of lumpy skin disease virus: A short review. Virus Res. 2019; 269: 197637. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2019.05.015

39. Turčinavičienė J., Petrašiūnas A., Bernotienė R., Masiulis M., Jonušaitis V. The contribution of insects to African swine fever virus dispersal: data from domestic pig farms in Lithuania. Med. Vet. Entomol. 2021; 35 (3): 484-489. doi: 10.1111/mve.12499.

40. Tzeng H. Y., Wu H. H., Ting L. J., Chang N. T., Chou Y. C., Tu W. C. Monitoring Taiwanese bovine arboviruses and non-arboviruses using a vectorbased approach. Med. Vet. Entomol. 2019; 33 (2): 195-202. doi: 10.1111/mve.12345.

41. You S., Liu T., Zhang M., Zhao X., Dong Y., Wu B., Wang Y., Li J., Wei X., Shi B. African swine fever outbreaks in China led to gross domestic product and economic losses. Nat. Food. 2021; 2. 802–808. https://doi.org/10.1038/s43016-021-00362-1


Рецензия

Для цитирования:


Крутько К.С., Кинарейкина А.Г., Серкова М.И., Силиванова Е.А., Фёдорова О.А. Выявление в кровососущих двукрылых насекомых Тюменской области генетического материала возбудителей вирусных болезней животных. Российский паразитологический журнал. 2022;16(4):389-402. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2022-16-4-389-402

For citation:


Krutko K.S., Kinareikina A.G., Serkova M.I., Silivanova E.A., Fedorova O.A. Detection of genetic material of causative agents of animal viral diseases in blood-sucking dipterans from the Tyumen Region. Russian Journal of Parasitology. 2022;16(4):389-402. (In Russ.) https://doi.org/10.31016/1998-8435-2022-16-4-389-402

Просмотров: 223


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1998-8435 (Print)
ISSN 2541-7843 (Online)