Cроки выведения остаточных количеств ивермектина из организма цыплят-бройлеров после применения Ивербутана

Цель исследований – изучить сроки выведения остаточных количеств ивермектина в результате трехкратного перорального введения препарата Ивербутан цыплятам-бройлерам.
Материалы и методы. Для эксперимента отобрано 18 голов цыплят-бройлеров в возрасте 28 сут. Птицу содержали в условиях Подольского опытно-производственного отдела ВНИИП – филиала ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН. Ивербутан в качестве действующих веществ содержит 0,4% ивермектина и 10,0% бутафосфана. Препарат задавали перорально групповым методом из расчета 1,0 мл Ивербутана на 1 л питьевой воды. Ивербутан выпаивали трехкратно: двукратно с интервалом 24 ч и один раз через 14 сут. Убой птиц и отбор проб органов и тканей проводили через 9, 14 и 19 сут после трехкратного применения препарата. Отбирали органы и ткани от 6 голов каждого вида: мышцы, печень, почки и кожу с подкожной жировой клетчаткой. Методика основана на определении ивермектина методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с предколоночной модификацией N-метилимидазолом и ангидридом трифторуксусной кислоты с последующим детектированием по флуоресценции. Количественное определение проводили методом внутреннего стандарта.
Результаты и обсуждение. Изучены сроки выведения остаточных количеств ивермектина из организма цыплят после трехкратного применения препарата. Остаточные количества, превышающие максимально допустимые уровни, определены через 9 и 14 сут после окончания применения препарата. Установлено, что через 19 сут органы и ткани цыплят не содержат ивермектина. Таким образом, через 19 сут после трехкратного применения Ивербутана мясо сельскохозяйственных птиц может быть использовано в пищу.

1. Акбаев Р. М. Эктопаразиты птицы на территории птицефабрик промышленного типа Нечерноземной зоны // Ветеринария. 2009. № 10. С. 32-38.

2. Гапонов С. П. Новые данные о фауне пухоедов (Mallophaga) в Воронежской области // Вестник Тверского государственного университета. Серия: Биология и экология. 2021. № 1 (61). С. 53-60. https://doi.org/10.26456/vtbio185

3. Единые санитарно-эпидемиологические и гигиенические требования к продукции (товарам), подлежащей санитарно-эпидемиологическому надзору (контролю). Комиссия таможенного союза, 2015.

4. Индюхова Е. Н., Арисова Г. Б., Белых И. П., Поселов Д. С., Степанов А. А. Изучение острой токсичности лекарственного препарата для ветеринарного применения Ивербутан // Российский паразитологический журнал. 2021. Т. 15. № 3. С. 76-82. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2021-15-3-76-82

5. Индюхова Е. Н. Субхроническая токсичность перорального препарата на основе ивермектина и бутафосфана на крысах // Ветеринарная патология. 2022. Т. 80. № 2. С. 36–44. https://doi.org/10.25690/VETPAT.2022.24.70.010

6. Мовсесян С. О., Петросян Р. А., Никогосян М. А., Варданян М. В., Теренина Н. Б., Воронин М. В. Мониторинг формирования паразитофауны животных при стойловом содержании и на ограниченных пастбищных территориях // «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями»: сборник научных статей по материалам Международной научной конференции. М., 2022. Вып. 23. С. 321-326. https://doi.org/10.31016/978-5-6046256-9-9.2022.23.321-326

7. МУК 4.1.1874-04. Определение массовой концентрации ивермектина в органах и тканях, плазме и молоке животных, обработанных препаратом иверсект, методом флуоресцентной высокоэффективной жидкостной хроматографии. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2009.

8. Сеньюва Х. З., Гилберт Д. Простое руководство для пользователей по разработке и валидации методов. М.: Ториус 77, 2011. 43 с.

9. Суслов В. В., Енгашева Е. С., Кедик С. А., Шняк Е. А., Максимова П. О. Пролонгированные формы антигельминтных препаратов // Российский паразитологический журнал. 2016. Т. 38. № 4. С. 539-546.

10. Эпштейн Н. А. Оценка пригодности (валидация) ВЭЖХ методик в фармацевтическом анализе (обзор) // Химико-фармацевтический журнал. 2004. Т. 38. № 4. С. 40-56.

11. Boulanger B., Chiap P., Dewe W., Crommen J., Hubert P. An analysis of the SFSTP guide on validation of chromatographic bioanalytical methods: progresses and limitations. J. Pharm. Biomed. Anal. 2003; 32: 753–765.

12. Carroll R. J., Ruppert D. Transformation and weighting in regression, Chapman and Hall, New York. 1998; 249.

13. Ermer J., Miller J. H. M. B. (ed.). Method validation in pharmaceutical analysis: A guide to best practice. John Wiley & Sons, 2006; 418.

14. Flajs V. C., Grabnar I. Ivermectin pharmacokinetics. Slov. Vet. Res. 2002; 39 (3/4): 167-78.

15. Hartmann C., Smeyers-Verbeke J., Massart D. L., McDowall R. D. Validation of bioanalytical chromatographic methods. Journal of pharmaceutical and biomedical analysis. 1998; 17 (2): 193-218.

16. Indyuhova E. N., Arisov M. V., Maximov V. I., Azarnova T. O. Characteristics of metabolic disorders in laying hens with dermanyssosis. Veterinarski Arhiv. 2022; 92(2): 161-169. https://doi.org/10.24099/vet.arhiv.1376

17. Indyuhova E., Arisov M., Maximov V., Azarnova T. Subchronic toxicity of ivermectin and butaphosphan in layer chickens. J. World Poult. Res. 2022; 12 (1): 38-45. https://dx.doi.org/10.36380/jwpr.2022.5

18. Moreno L., Dominguez P., Farias C., Canton L., Virkel G., Mate L., Ceballos L., Lanusse C. E., Alvares L. Ivermectin pharmacokinetics, metabolism, and tissues/egg residue profiles in laying hens. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2015; 63 (47): 10327–10332.

19. Moreno L., Lanusse C. Chapter 23 - veterinary drug residues in meat-related edible tissues. Woodhead Publishing Series in Food Science, Technology and Nutrition. 2017. 581-603. https://doi.org/10.1016/B978-0-08-100593-4.00024-2

20. Schechtman L. M. Internationally harmonized processes for test method evaluation, validation and regulatory acceptance: The role of OECD guidance document 34. Japanese Society for Alternatives to Animal Experiments. 2008; 14: 475-782.

21. Shrivastava A., Gupta V. B. Methods for the determination of limit of detection and limit of quantitation of the analytical methods. Chronicles of young scientists. 2011; 2 (1): 21-25.