Влияние сифациоза на биохимические и клинические показатели крови лабораторных крыс
https://doi.org/10.31016/1998-8435-2022-16-3-296-302
Аннотация
Цель исследований – изучение влияния сифациоза на биохимические и клинические показатели крови аутбредных крыс.
Материалы и методы. Аутбредные крысы-самцы массой тела 180–200 г обследованы на наличие яиц гельминтов методами копроовоскопии и скотч-теста с использованием микроскопа «Микромед 1 вар.2-20». Биохимический анализ крови проведен на анализаторе Beckman Coulter DxC 700AU (США), гематологический анализ – на анализаторе PCE 90-Vet (США). Для профилактической дегельминтизации использовали фенбендазол. Статистическую обработку проводили с помощью компьютерной программы Studet200.
Результаты и обсуждение. Результаты проведенных исследований по биохимии и гематологии крови аутбредных крыс, показали достоверное снижение уровня ЛДГ и повышение содержания гематокрита у животных, зараженных Syphacia spp.
Об авторах
Н. Б. ЕмельяноваРоссия
Надежда Борисовна Емельянова - кандидат биологических наук
117218, Москва, ул. Б. Черемушкинская, 28
О. П. Курносова
Россия
Ольга Петровна Курносова - кандидат биологических наук
117218, Москва, ул. Б. Черемушкинская, 28
Список литературы
1. Абдрашитова Э. Х., Зайцев Т. И., Брауде Н. А., Комаровская Т. П., Новикова Р. Ф., Полещук В. Д., Кухдинг Е., Кнопке К. и др. Категории качества лабораторных грызунов по состоянию здоровья и их стандартизация // «Лабораторное животноводство для медикобиологических и биотехнологических исследований»: тезисы конференции. М., 1990. С. 58-65.
2. Аксенов В. И. Общие задачи контроля качества здоровья лабораторных животных // «Актуальные вопросы стандартизации лабораторных животных для медико-биологических исследований»: тезисы Всесоюзной конференции. М., 1988. Ч. 1. С. 3-5.
3. Болотских Л. А., Бескова Т. Б., Галахова Т. В., Зайцев Т. И. Гнобиотический метод получения и содержания племенных ядер лабораторных животных СПФ категорий // «Лабораторное животноводство для медико-биологических и биотехнологических исследований»: тезисы конференции. М., 1990. С. 46.
4. Гришина Е. А., Еровиченков А. А. Биохимическое обоснование применения комплексной терапии в острой фазе экспериментальных гельминтозов животных // Журнал инфектологии. Санкт-Петербург, 2017. Т. 9, № 3. С. 32-39.
5. Душкин В. А. Лабораторное животноводство. М.: Россельхозиздат, 1980. 48 с.
6. Зайцев Т. И. Контроль качества лабораторных животных // «Актуальные вопросы стандартизации лабораторных животных для медико-биологических исследований»: тезисы Всесоюзной конференции. М., 1988. Ч. 1. С. 19-21.
7. Западнюк И. П., Западнюк В. И., Захария Е. А. Лабораторные животные: Разведение, содержание, использование в эксперименте. Киев: Вища школа, 1974. 304 с.
8. Климова Е. С., Бабинцева Т. В. Паразитофауна лабораторных грызунов // Ученые записки казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. Казнь, 2019. Т. 240, № 4. С. 105-108.
9. Лаукайтес В. Л., Йонаускене И. Д., Ефимов В. И., Лугаускене А. Ю. Ветеринарно-санитарный мониторинг качества лабораторных животных в питомнике Института биохимии АН Литовской ССР // «Актуальные вопросы диагностики инфекционных болезней лабораторных животных, разработка и производство современных диагностических тест-систем»: тезисы Всесоюзного симпозиума. М., 1989. С. 69.
10. Масленникова О. В., Ерофеева В. В., Пухлянко В. П. Сифациоз грызунов и его эколого-эпидемиологическое значение // Фундаментальные исследования. 2014. № 9-7. С. 1542-1544.
11. Черепанов А. А., Москвин А. С., Котельников Г. А., Хренов В. М. Атлас Дифференциальная диагностика гельминтозов по морфологической структуре яиц и личинок возбудителя. Атлас. М., 2001.
12. Шемякова С. А., Неклюдова Н. М. Паразитофауна лабораторных мышей в условиях вивария онкологического центра РАМН и совершенствование мер борьбы с сифациозом // «Вопросы ветеринарии и ветеринарной биологии»: сборник научных трудов молодых ученых. Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К. И. Скрябина. 2006. С. 128-133.
13. Bazzano T., Restel T.I., Pinto R.M., Gomes D.C. Patterns of Infection with the Nematodes Syphacia obvelata and Aspiculuris tetraptera in Conventionally Maintained Laboratory Mice. Mem. Inst. Oswaldo Cruz-Rio de Janeiro. 2002; 97 (6): 847-853.
14. Chan K.F. Chemotherapeutic studies on Syphacia obvelata infection in mice. Amer. J. Hyg. 1952; 56 (1): 22-30.
15. Harder A. The biochemistry of Haemonchus contortus and other parasitic nematodes. Advances in parasitology. 2016; 93: 69-94.
16. Pinto R.M., Goncalves L., Noronha D., Gomes D.C. Worm Burdens in Outbred and Inbred Laboratory Rats with Morphometric Data on Syphacia muris (Yamaguti, 1935) Yamaguti, 1941 (Nematoda, Oxyuroidea). Mem. Inst. Oswaldo Cruz. Rio de Janeiro. 2001; 96 (1): 133-136.
Рецензия
Для цитирования:
Емельянова Н.Б., Курносова О.П. Влияние сифациоза на биохимические и клинические показатели крови лабораторных крыс. Российский паразитологический журнал. 2022;16(3):296-302. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2022-16-3-296-302
For citation:
Emelyanova N.B., Kurnosova O.P. Effect of syphaciosis on biochemical and clinical blood parameters of laboratory rats. Russian Journal of Parasitology. 2022;16(3):296-302. (In Russ.) https://doi.org/10.31016/1998-8435-2022-16-3-296-302