Обзор легочных нематодозов домашних кошек с описанием первого случая элюростронгилеза у кошки на территории России

Цель исследований: обрисовать современное состояние проблемы легочных нематодозов у домашних кошек, обратить на неё внимание ветеринарных работников, повысить их осведомленность об особенностях методов диагностики данных гельминтозов.
Материалы и методы. Проанализированы современные литературные данные о распространении, видовом составе, дифференциальной морфологии, биологии, патогенном влиянии, методах диагностики возбудителей легочных нематодозов у кошек. При описании случая элюростронгилёза у животного наблюдали его клиническое состояние; были проведены общеклиническое и биохимическое исследование крови, диагностика вирусных инфекций, ультразвуковое исследование брюшной полости. Паразитологическое исследование фекалий проводили флотационным методом и по методу Бермана.
Результаты и обсуждение. Проведен обзор мировой литературы по легочным нематодозам домашних кошек. Большинство возбудителей представлено видами нескольких семейств метастронгилоидей; наиболее распространенными и клинически значимыми представителями являются: Aelurostrongylus abstrusus (сем. Angiostrongylidae), Troglostrongylus brevior (Crenosomatidae), Oslerus rostratus (Filaroididae). Также в дыхательной системе у кошек могут паразитировать Eucoleus aerophilus (Trichurida: Capillariidae) и Metathelazia massinoi (Spirurida: Pneumospiruridae). Впервые в России описан случай элюростронгилёза у домашней кошки. При копрологическом исследовании по методу Бермана у бездомного 3-месячного котенка из Московской области в 1 г фекалий обнаружено 104 экз. личинок первой стадии легочных нематод вида Aelurostrongylus abstrusus. Размеры личинок составили 360–380 мкм в длину; хвостовой конец имел характерное строение – двойной изгиб в форме буквы «S», дорсальный шипообразный вырост и вентральную вырезку. Для ветеринарной практики рекомендуется при наличии клинических признаков поражения респираторной систему у кошек из группы риска (свободно гуляющие животные, котята, уличные кошки) включать в дифференциальную диагностику легочные нематодозы с использованием надлежащих диагностических тестов.

1. Есаулова Н. В., Найденко С. В., Рожнов В. В., Эрнандес-Бланко Х. А., Василевич Ф. И. Фауна гельминтов крупных кошачьих Дальнего Востока России // Материалы V научно-практической конференции Международной ассоциации паразитоценологов «Паразитарные системы и паразитоценозы животных». Изд-во: Витебская государственная академия ветеринарной медицины, 2016. С. 64-66.

2. Контримавичус В. Л., Делямуре С. Л., Боев С. Н. Основы нематодологии. Т. 26. Метастронгилоидеи домашних и диких животных. М.: Наука, 1976. 238 с.

3. Контримавичус В. Л., Делямуре С. Л. Основы нематодологии. Том. 29. Филяроидиды домашних и диких животных. М.: Наука, 1979. 156 с.

4. Масленникова О. В. Гельминтофауна промысловых животных в природных биоценозах кировской области: дис. … канд. биол. наук. М., 2005. 282 с.

5. Романов И. В. Эколого-фаунистическое изучение гельминтов плотоядных Среднего Поволжья с разработкой вопросов эпидемиологии важнейших гельминтозоонозов: автореф. дис. … д-ра биол. наук. М., 1970. 31 с.

6. Рухлядев Д. П., Рухлядева М. И. Гельминтофауна куньих и других хищников Северо-Западного Кавказа // Тр. Кавказск. Заповедн. Майкоп, 1959. Вып. 5. С. 125-135.

7. Середкин И. В., Гудрич Д. М., Льис Д., Микелл Д. Г., Есаулова Н. В., Коняев С. В. Инфекционные и эндопаразитарные заболевания амурского тирга // Вестник КрасГАУ. 2015. № 12. С. 185-191.

8. Серёдкин И. В., Есаулова Н. В., Транбенкова Н. А., Борисов М. Ю., Петруненко Ю. К., Мухачева А. С. Фауна гельминтов медведей и тигра на Дальнем Востоке России // Международная научно-практическая конференция «Инновационные технологии в ветеринарной медицине, животноводстве и природоохранном комплексе Дальневосточного региона». Уссурийск, 2012. С. 204-210.

9. Anderson R. C. Nematode parasites of vertebrates. Their development and transmission. Wallingford; CAB International, UK., 2000; 605-614. https://doi.org/10.1079/9780851994215.0001

10. Annoscia G., Latrofa M. S., Campbell B. E. Simultaneous detection of the feline lungworms Troglostrongylus brevior and Aelurostrongylus abstrusus by a newly developed duplex-PCR. Vet Parasitol. 2014; 199: 172-178. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2013.10.015

11. Bowman D. D., Hendrix C. M., Lindsay D. S., Barr S. C. (Eds). Feline Clinical Parasitology. WileyBlackwell. 2008; 480.

12. Brianti E., Gaglio G., Giannetto S., Otranto D. et al. Troglostrongylus brevior and Troglostrongylus subcrenatus (Strongylida: Crenosomatidae) as agents of broncho-pulmonary infestation in domestic cats. Parasites & Vectors. 2012; 5(1): 178. https://doi.org/10.1186/1756-3305-5-178.AND SYSTEMATICS OF PARASITES

13. Brianti E., Gaglio G., Napoli E. Evidence for direct transmission of the cat lungwormTroglostrongylus brevior (Strongylida: Crenosomatidae). Parasitology. 2013; 140: 821-824. https://doi.org/10.1017/S0031182013000188

14. Brianti E., Gaglio G., Napoli E. Feline lungworm Oslerus rostratus (Strongylida: Filaridae) in Italy: first case report and histopathological findings. Parasitol Res. 2014; 113: 3853-3857. https://doi.org/10.1007/s00436-014-4053-z

15. Brianti E., Giannetto S., Dantas-Torres F. Lungworms of the genus Troglostrongylus (Strongylida: Crenosomatidae): neglected parasites for domestic cats. Vet. Parasitol. 2014; 202: 104-112. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2014.01.019

16. Brianti E., Varcasia A., Otranto D. Troglostrongylus brevior. Trends in Parasitology. 2021; 37 (6): 569-570. https://doi.org/10.1016/j.pt.2020.11.006

17. Briggs K. R., Yaros J. P., Liotta J. L. Detecting Aelurostrongylus abstrusus-specific IgG antibody using an immunofluorescence assay. J. Feline Med. Surg. 2013; 15: 1114-1118. https://doi.org/10.1177/1098612X13489977

18. Capari B., Hamel D., Visser M., Winter R., Pfister K., Rehbein S. Parasitic infections of domestic cats, Felis catus, in western Hungary. Veterinary Parasitology. 2013; 192. 33-42. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2012.11.011

19. Cesare A. D., Morelli S., Colombo M., Simonato G., Veronesi F., Marcer F., Diakou A., D'Angelosante R., Pantchev N., Psaralexi E., Traversa D. Is Angiostrongylosis a Realistic Threat for Domestic Cats? Front Vet. Sci. 2020; 7: 195. https://doi.org/10.3389/fvets.2020.00195

20. Colella V., Mutafchiev Y., Cavalera M. A., Giannelli A., Lia R. P., Dantas-Torres F., Otranto D. Development of Crenosoma vulpis in the common garden snail Cornu aspersum: implications for epidemiological studies. Parasit. Vectors. 2016; 9. 208. https://doi.org/10.1186/s13071-016-1483-8

21. Conboy G. A. Helminth parasites of the canine and feline respiratory tract. Vet. Clin. North Am. Small Anim. Pract. 2009; 39: 1109-1126. https://doi.org/10.1016/j.cvsm.2009.06.006

22. Crisi P. E., Di Cesare A., Boari A. Feline troglostrongylosis: current epizootiology, clinical features, and therapeutic options. Front Vet. Sci. 2018; 5: 126. https://doi.org/10.3389/fvets.2018.00126

23. Davtian E. A. Ein neuer Nematode aus den Lungen der Hauskatze. Osleroides massino, nov. sp. Deutsch. Tierarztl. Wochenschr. 1933; 41 (24): 372-374.

24. Di Cesare A., Castagna G., Otranto D. Molecular detection of Capillaria aerophila, an agent of canine and feline pulmonary capillariosis. J. Clin. Microbiol. 2012; 50: 1958-1963. https://doi.org/10.1128/JCM.00103-12

25. Di Cesare A., Crisi P.E., Di Giulio E., Veronesi F., di Regalbono A.F., Talone T., Traversa D. Larval development of the feline lungworm Aelurostrongylus abstrusus in Helix aspersa. Parasitol. Res. 2013; 112: 3101-3108. https://doi.org/10.1007/s00436-013-3484-2

26. Di Cesare A., di Regalbono A. F., Tessarin C. Mixed infection by Aelurostrongylus abstrusus and Troglostrongylus brevior in kittens from the same litter in Italy. Parasitol. Res. 2014; 113: 613-618. https://doi.org/10.1007/s00436-013-3690-y

27. Diakou A., Migli D., Di Cesare A., Traversa D. et al. Angiostrongylus chabaudi: first description of the diagnostic stage and confirmation of European wildcat as definitive host. Conference: Fifth European Dirofilaria and Angiostrongylus Days, Parasites & Vectors. 2016; 10 (1): A39. 18-19.

28. Diakou A., Psalla D., Migli D., Di Cesare A., Youlatos D., Marcer F., Traversa D. First evidence of the European wildcat (Felis silvestris silvestris) as definitive host of Angiostrongylus chabaudi. Parasitol. Res. 2016; 115: 1235. https://doi.org/10.1007/s00436-015-4860-x

29. Esaulova N., Naidenko S., Rozhnov V., Vasilevich F., Hernandez-Blanco J. A., Poyarkov A., Karnaukhov A., Pavlova E. Helminths of rare feline species (Felidae) in Siberia and the Russian Far east. Int. J. Res. Ayurveda Pharm. 2017; 8 (2). https://doi.org/10.7897/2277-4343.08267

30. Foster S. F., Martin P. Lower respiratory tract infections in cats: reaching beyond empirical therapy. J. Feline Med. Surg. 2011; 3: 313-332. https://doi.org/10.1016/j.jfms.2011.03.009

31. Gavrilović P., Jovanović M., Gavrilović A., Nešić S. Fatal aelurostrongylosis in a kitten in Serbia. Acta Parasitologica. 2017; 62 (2): 488-491.https://doi.org/10.1515/ap-2017-0058

32. Gerichter C. B. Studies on the nematodes parasitic in the lungs of Felidae in Palestine. Parasitology. 1949; 39: 251-262. https://doi.org/10.1017/s0031182000083827.

33. Giannelli A., Capelli G., Joachim A., Hinney B., Losson B. et al. Lungworms and gastrointestinal parasites of domestic cats: a European perspective. International Journal for Parasitology. 2017; 47. 517-528. http://dx.doi.org/10.1016/j.ijpara.2017.02.003

34. Giannelli A., Kirkova Z., Abramo F., Latrofa M.S., Campbell B., Zizzo N., Cantacessi C., Dantas-Torres F., Otranto D. Angiostrongylus chabaudi in felids: New findings and a review of the literature. Vet. Parasitol. 2016; 228. 188-192. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2016.09.007

35. Giannelli A., Passantino G., Ramos R.A., Lo Presti G., Lia R. P., Brianti E., Dantas-Torres F., Papadopoulos E., Otranto D. Pathological and histological findings associated with the feline lungworm Troglostrongylus brevior. Vet. Parasitol. 2014; 204. 416-419. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2014.05.020

36. Grabarevic Z., Curic S., Tustonja A., Artukovic B., Šimec Z., Ramadan K., Zivicnjak T. Incidence and regional distribution of the lungworm Aelurostrongylus abstrusus in cats in Croatia. Veterinarski Arhiv. 1999; 69. 279-287.

37. Headley S. A. Aelurostrongylus abstrusus induced pneumonia in cats: pathological and epidemiological findings of 38 cases (1987–1996). Semin Ciênc Agrár. 2005; 26: 373-380. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2005v26n3p373.

38. Juste R. A., Garcia A. L., Mencìa L. Mixed infestation of a domestic cat by Aelurostrongylus abstrusus and Oslerus rostratus. Angew Parasitol. 1992; 33: 56-60.

39. Kiszely S., Gyurkovszky M., Solymosi N., Farkas R. Survey of lungworm infection of domestic cats in hungary. Acta Veterinaria Hungarica. 2019; 67 (3): 407-417. https://doi.org/10.1556/004.2019.041

40. Knaus M., Kusi I., Rapti D., Xhaxhiu D., Winter R., Visser M., Rehbein S. Endoparasites of cats from the Tirana area and the first report on Aelurostrongylus abstrusus (Railliet, 1898) in Albania. The Wiener Klinische Wochenschrift. 2011; 123. 31-35. https://doi.org/10.1007/s00508-011-1588-1

41. Lacorcia L., Gasser R. B., Anderson G. A. Comparison of bronchoalveolar lavage fluid examination and other diagnostic techniques with the Baermann technique for detection of naturally occurring Aelurostrongylus abstrusus infection in cats. J. Am. Vet. Med. Assoc. 2009; 235: 43-49. https://doi.org/10.2460/javma.235.1.43.

42. López C., Panadero R., Paz A. Larval development of Aelurostrongylus abstrusus (Nematoda, Angiostrongylidae) in experimentally infected Cernuella (Cernuella) virgata (Mollusca, Helicidae). Parasitol. Res. 2005; 95: 13-16. https://doi.org/10.1007/s00436-004-1244-z.

43. Millán J., Casanova J. C. High prevalence of helminth parasites in feral cats in Majorca Island (Spain). Parasitol. Res. 2009; 106: 183-188. https://doi.org/10.1007/s00436-009-1647-y

44. Mircean V., Titilincu A., Vasile C. Prevalence of endoparasites in household cat (Felis catus) populations from Transylvania (Romania) and association with risk factors. Vet. Parasitol. 2010; 171. 163-166. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2010.03.005

45. Miro G., Montoya A., Jimenez S., Frisuelos C., Mateo M., Fuentes I. Prevalence of antibodies to Toxoplasma gondii and intestinal parasites in stray, farm and household cats in Spain. Vet. Parasitol. 2004; 126. 249-255. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2004.08.015

46. Murad B., Yankova S., Shiron M., Tonev A., Iliev P., Kirkova Z., Tsachev I. Clinical cases of Aelurostrongylus abstrusus and feline immunodeficiency virus co-infection in cats. Tradition and modernity in veterinary medicine. 2019; 4. 1(6): 46-50.

47. Nabais J., Margarida A.A., Gomes L., da Silva J. F., Nunes T., Vicente G., de Carvalho L. M. Aelurostrongylus abstrusus in cats and Angiostrongylus vasorum in dogs from Lisbon, Portugal. Acta Parasitológica Portuguesa. 2014; 20 (1/2): 35-40.

48. Payo-Puente P., Botelho-Dinis M., Carvaja Uruena A. M., Payo-Puente M., Gonzalo-Orden J. M., Rojo-Vazquez F. A. Prevalence study of the lungworm Aelurostrongylus abstrusus in stray cats of Portugal. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2008; 10. 242-246. https://doi.org/10.1016/j.jfms.2007.12.002

49. Pechman R. D. Respiratory parasites. In: Sherding R. G. (eds). The cat: diseases and clinical management. 2nd ed. New York: Churchill Livingstone, 1994; 613-622.

50. Pennisi M. G., Netta P. P., Giannetto S. Lungworm disease in cats caused by Aelurostrongylus abstrusus. Tijdschr Diergeneeskd. 1995; 120: 263-266.

51. Rassouli M., Ghaderi J., Goudarzi A., Sabouri S. Aelurostrongylus abstrusus in a stray cat’s blood stream. Comparative Clinical Pathology. 2014; 24 (4). https://doi.org/10.1007/s00580-014-1979-6

52. Stoichev I., Sherkov S., Halachev M. Pathology of cats from a region of Bulgaria with human endemic nephropathy. Journal of Comparative Pathology. 1982; 92. 99-107. https://doi.org/10.1016/0021-9975(82)90045-7

53. Traversa D., Di Cesare A. Cardio-pulmonary parasitic nematodes affecting cats in Europe: unraveling the past, depicting the present, and predicting the future. Front Vet. Sci. 2014; https://doi.org/1:11.10.3389/fvets.2014.00011OF PARASITES

54. Traversa D., Di Cesare A. Diagnosis and management of lungworm infections in cats. Cornerstones, dilemmas and new avenues. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2016; 18. 7-20. https://doi.org/10.1177/1098612X15623113

55. Traversa D., Di Cesare A. Feline lungworms: what a dilemma. Trends Parasitol. 2013; 29: 423-430. https://doi.org/10.1016/j.pt.2013.07.004

56. Traversa D., Di Cesare A., Conboy G. Canine and feline cardiopulmonary parasitic nematodes in Europe: emerging and underestimated. Parasit. Vectors. 2010; 3: 62. https://doi.org/10.1186/1756-3305-3-62

57. Traversa D., Di Cesare A., Lia R. P. New insights into morphological and biological features of Capillaria aerophila (Trichocephalida, Trichuridae). Parasit. Res. 2011; 109 (1): S97-104. https://doi.org/10.1007/s00436-011-2406-4

58. Traversa D., Guglielmini C. Feline aelurostrongylosis and canine angiostrongylosis: a challenging diagnosis for two emerging verminous pneumonia infections. Vet. Parasitol. 2008; 157: 163-174. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2008.07.020

59. Traversa D., Iorio R., Otranto D. Diagnostic and clinical implications of a nested PCR specific for ribosomal DNA of the feline lungworm Aelurostrongylus abstrusus (Nematoda, Strongylida). J. Clin. Microbiol. 2008; 46: 1811-1817. https://doi.org/10.1128/JCM.01612-07

60. Traversa D., Lia R. P., Iorio R. Diagnosis and risk factors of Aelurostrongylus abstrusus (Nematoda, Strongylida) infection in cats from Italy. Vet. Parasitol. 2008; 153: 182-186. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2008.01.024

61. Varcasia A., Brianti E., Tamponi C. Simultaneous infection by four feline lungworm species and implications for the diagnosis. Parasitol. Res. 2015; 114: 317-321. https://doi.org/10.1007/s00436-014-4207-z

62. Yanchev Y., Genov T. Helminth fauna of the wild cat, Felis silvestris Schreb., in Bulgaria. Khelmintologiya. 1978; 6: 81-101 (in Bulg. Russ, arid Engl, summ.)

63. Zajac A. M., Conboy G. A. Veterinary clinical parasitology. 8rd edn. Wiley-Blackwell, Chichester., 2012; 368.