СОПОСТАВИМОСТЬ РЕЗУЛЬТАТОВ СЕРОЛОГИЧЕСКОГО МО-НИТОРИНГА ЛИЧИНОК ECHINOCOCCUS GRANULOSUS И TAENIA HYDATIGENA У ОВЕЦ С УРОВНЕМ ЗАРАЖЕННОСТИ

Цель исследования – провести серологический мониторинг овец при эхинококкозе и тенуикольном цистицеркозе с последующим их убоем и сопоставлением данных серологических испытаний с результатами послеубойного анализа. Материалы и методы. Исследовали 225 проб сывороток овец. Антигенами в ELISA служили экскреторно-секреторные продукты протосколексов Eglи Thl, конъюгатом – антитела кроличьи, аффинно-очищенные, специфичные к иммуноглобулинам овцы, меченные пероксидазой. Результаты и обсуждение. Установлена чувствительность иммунотеста с антигеном из протосколексов Egl – 75,6–77,8 %, а из протосколексов Thl – 71,1–75,6 %. Специфичность ELISA, которую оценивали с сыворотками клинически здоровых овец, составила с антигеном из протосколексов Egl 73,3 %, а из протосколексов Thl – 71,1 %. Отмечены раз-личия в числе положительно реагирующих овец в ELISA с данными их зараженности це-стодами по результатам вскрытия. Совпадение показателей иммуноферментного анализа сывороток овец с результатами зараженности животных Egl составило 88,2–91,4 %, а Thl – 81,3–93,5 %, в среднем, соответственно 90,0 и 86,5 %. Дано заключение о возможности использования ELISA с антигенами из протосколексов паразитов для сероэпизоотологического мониторинга цистного эхинококкоза и цистицеркоза (Thl).

1. Агеева Н. Н. Особенности эпидемиологического и эпизоотологического процессов в очагах эхинококкоза на Европейском Севере на примере Ненецкого автономного округа // Матер. 4-й Всес. науч. конф. – Чимкент, 1989. – С. 3.

2. Бережко В. К., Клименко В. В. Эффективность различных антигенов эхинококка в иммунодиагностике эхинококкоза // Тез. докл. научн.-практ. конф. «Современное состояние и перспективы оздоровления хозяйств от эхинококкоза и цистицеркозов». – Караганда, 1990. – С. 30–31.

3. Бережко В. К. Иммунологическая реактивность, иммунодиагностика и иммунопрофилактика при гельминтозах животных: дис. ... д-ра биол. наук. – M., 1994. – 474 c.

4. Биттиров А. М., Чилаев С. Ш., Балкизова З. В. Биогеографические особенности тенуикольного цистицеркоза мелкого рогатого скота и гидатидного тениоза домашних и диких плотоядных на Северном Кавказе // Рос. паразитол. журнал. – 2009. – № 3. – С. 54–58.

5. Елканова З. З. Эпизоотологическая и эпидемиологическая характеристика очагов эхинококкоза животных и человека в экосистеме Кабардино-Балкарской Республики: дис. ... канд. биол. наук. – М., 2010. – 169 c.

6. Ирьянов И. Г. Эпизоотолого-эпидемиологические показатели паразитарной системы эхинококкозной инвазии в Южном федеральном округе РФ: дис. ... канд. вет. наук. – 2008. – 178 с.

7. Клебановская И. А., Старостина О. Ю., Рудаков В. А., Малькова М. Г. Опыт работы иммунологического центра по выявлению больных эхинококками и организации диспансерного наблюдения // Тез. докл. науч.-практ. конф. «Современное состояние и перспективы оздоровления от эхинококкоза и цистицеркозов». – 1990. – C. 74–75.

8. Плиева А. М. Эхинококкоз животных в регионе Северного Кавказа (биология, эпизоотология, иммунодиагностика и усовершенствование мер борьбы): дис. ... д-ра биол. наук. – М., 2007. – 331 с.

9. Подопригора Г. И., Старкова Т. В. Эхинококкозы: методы исследования, лечения, профилактики. – М., 1990. – С. 62–70.

10. Сапач В. К., Орешникова Н. И., Демидова Л. Я. Серологические методы в диагностике легочного эхинококка // Тез. докл. науч. конф. «Методы профилактики и борьбы с эхинококками и другими цестодами человека и животных». – М., 1993. – 65 с.

11. Сивкова Т. Н., Бережко В. К. Эффективность антигенов клеточной культуры протосколексов Echinococcus granulosus и Echinococcus multilocularis в диагностике цистного гидатидоза свиней // Ветеринария. – 2002. – № 10. – C. 32–34.

12. Aflaki A., Ghaffarifar F., Dalimi Asl A. Seroepidemiological survey of human hydatidosis using Dot-ELISA in Ilam Province (Western part of Iran). Modares Journal of Medical Sciences: Pathobiology, 2004, vol. 8, no 1, pp. 1–6.

13. Allintas N., Yazar S., Yolasigmaz A., Akisu C., Sakru N., Karacasu F., & Guzelant A. A sero-epidemiological study of cystic echinococcosis in İzmir and its surrounding area, Turkey. Helminthologia, 1999, vol. 36. – no. 1. – pp. 19–23.

14. Ben–Ysmail R., Carme B., Niel G., Gentilini M. Non-specific serological reactions with Echinococcus granulosus antigens: role of onti-P1 antibodies. Amer. J. Trop. Med. and. Hyd., 1980, vol. 29, no. 2, pp. 239–245.

15. Cheng N., Jiang C.P. Cao H.X., Wang Q., Cao D.R. Evaluation of the screening programmes of human hydatidosis in epidemiological survey. 16-th Gut. Congr. of Hydatidology. Abstracts. Beijing, Oct. 12–16, Beijing, China, 1993, p. 135.

16. Deka D.K., Gaur S.N.S. Countercurrent immunoelectrophoresis in the diagnosis of Taenia hydatigena cysticercosis in goats Veterinary Parasitology, 1990, vol. 37, pp. 223–228.

17. Dottorini S. Sparvoli M. Baldelli F. Fiorio M. Tassi C. Echinococcus granulosus: diagnosis of hydatid disease in sheep. Riv. Parasitol., 1984, vol. 45, no. 2, pp. 333–340.

18. Garabedian J.A. Evaluation of the reactivity of hydatid whole scolex antigen in hydatid disease serology. Ann. Trop. Med. Parasit., 1971, vol. 65, no. 3. – pp. 385–391.

19. Hussein A. S., Abdel–Hafez S.K., Khalil A.M. Isolation and Characterization of Excretory/ Secretory Products from In Vitro Developmental Stages of Echinococcus granulosus. Journal Parasitology, 1994, vol. 43, no. 2. – pp. 82–89.

20. Ito A., Ma L., Schantz P.M., Gottstein B., Liu Y., Chai J., Abdel–Hafez S.K., Altintas N., Joshi D.D., Lightowlers M.W., Pawlowski Z.S. Differential diagnosis for cystic and alveolar echinococcosis using fractions of Echinococcus granulosus cyst fluid (antigen B) and E. multilocularis protoescolex (EM 18). Am. J. Trop. Med. Hyg., 1999, vol. 60, pp. 188–192.

21. Monzón C. M., Coltorti E. A., Varela–Díaz V. M. Application of antigens from Taenia hydatigena cyst fluid for the immunodiagnosis of human hydatidosis. Zeitschrift für Parasitenkunde, 1985, vol. 71, no. 4, pp. 533–537.

22. Panda M.R. Diagnosis of Cysticercus tenuicollis in sheep and goat by indirect ELISA employing oncosphere antigen. Indian Journal of Animal Sciences, 2004, vol. 74, no. 9, pp. 911–914.

23. Pathak K.M., Gaur S.N., Gard S.K. Counter current immunoelectrophoresis a new technique for the rapid serodiagnosis of paccine cysticercosis. J. Helminthol, 1984, vol. 58, no. 4. – pp. 321–324.

24. Rafiei A., Craig P.S. The immunodiagnostic potential of protoscolex antigens in human cystic echinococcosis and the possible influence of parasitic strain. Ann. Trop. Med and Parasitol, 2002, vol. 96, no. 4, pp. 383–389.

25. Zhu X. Q., Dou L.Q., Shi X.H., Sun X.Q., Wang X.Q, Niu B.H. Stadies on excretory-secretory antigens of Echinococcus granulosus. Int. Conf. on Parasitic Zoonoses, Changchun, China, 1994, pp. 18–19.