Лоймологически значимые гельминты ластоногих на Чукотке

Цель исследований: изучение гельминтофауны ластоногих на Чукотке, а также анализ зараженности рыб основных промысловых семейств возбудителями гельминтозоонозов на основании современных данных литературы.

Материалы и методы. Сборы гельминтов проводили осенью 2019 г. от ластоногих, добытых в Мечигменской губе Берингова моря в Чукотском АО методом частичного гельминтологического вскрытия по К. И. Скрябину (желудочно-кишечный тракт). Были исследованы образцы от 6 моржей и 26 тюленей (13 ларг и 13 кольчатых нерп). Обнаруженных гельминтов фиксировали в 70%-ном спирте. Видовую принадлежность гельминтов определяли на кафедре паразитологии и ВСЭ МВА им. К. И. Скрябина с использованием справочной литературы.

Результаты и обсуждение. Все ластоногие были заражены нематодами из сем. Anisakidae. У моржа обнаружены половозрелые Pseudoterranova desipiens (ЭИ = 16,7% при ИИ = 3 экз./гол.), у ларги – половозрелые Ps. desipiens, а также личинки Contracoecum osculatum и Anisakis simplex (ЭИ = 30,8 % при ИИ от 5 до 57 экз.), у кольчатой нерпы – личинки и половозрелые Ps. desipiens (ЭИ = 15,4 % при ИИ от 1 до 4 экз.). Таким образом, только вид Ps. desipiens был представлен половозрелыми стадиями (самками и самцами), два других вида анизакид – C. osculatum и A. simplex присутствовали в организме тюленей в личиночной стадии.

1. Айнана Л., Леонтьев В., Теин Т., Богословская Л. 2007. Традиционная пища азиатских эскимосов и береговых чукчей. В кн.: Основы морского зверобойного промысла. Научно-методическое пособие. М.: Институт Наследия, 2007. С. 390-398.

2. Арсенов А. К. Некоторые черты биологии азиатской корюшки акватории Анадырского лимана Берингова моря // «Комплексные исследования и переработка морских и пресноводных гидробионтов»: Тез. докл. Всерос. конф. молодых ученых. Владивосток: ТИНРО-Центр, 2003. С. 7-9.

3. Батанов Р. Л. Распределение и состояние запасов массовых донных рыб в Северо-Западной части Берингова моря // «Комплексные исследования и переработка морских и пресноводных гидробионтов»: Тез. докл. Всерос. конф. молодых ученых. Владивосток: ТИНРО-Центр, 2003. С. 16-18.

4. Витомскова Е. А. Гельминты промысловых рыб Северного Приохотья, опасные для человека и животных: автореф. дис. … канд. вет. наук. Магадан, 2000. 19 с.

5. Гаевская А. В. Анизакидные нематоды и заболевания, вызываемые ими у животных и человека. Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2005. 223 с.

6. Козлов А. Современный взгляд на проблемы питания морских зверобоев Арктики. В кн: Основы морского зверобойного промысла. Научно-методическое пособие. М.: Институт Наследия, 2007. С. 369–389.

7. Козлов А., Вершубская Г. Витамин D и здоровье северян // Лицом к морю. Памяти Людмилы Богословской. Наследие Берингии. М., 2016. Вып. 3. С. 344-362.

8. Михайлов С. В. Фауна паразитов минтая Дальневосточных морей: автореф. дис. … канд. биол. наук, Владивосток, 2002. 22 с.

9. Aibinu I. E., Smooker P. M, Lopata A. L. Anisakis nematodes in fish and selfish from infection to allergies. Parasit. Wildl. 2019; 6 (9): 384-393.

10. Dierauf L. A., Gulland F. M. D. Marine Mammal Medicine. Boca Raton London New York Washington, D. C., 2001; 357-374.

11. Fay F. H. Ecology and biology of the pacific walrus, Оdobenus rosmarus divergens Illiger. Washington, D. C.: United States Department of the Interior Fish and Wildlife Service, 1982; 228-229.

12. Fiorenza E., Wendt C. A., Dobkowski K., King T., Papaionou M., Rabinowitz P., Samhouri J., Wood C. It is wormy world: meta-analysis reveals several decades of change in the global abundance of the parasitic nematodes Anisakis spp. and Pseudoterranova spp. in nature fishes and invertebrates. Glob. Chang. Biol. 2020; 26 (5): 2854-2866.

13. Fukui S., Matsuo T., Mori N. Palatine tonsillar infection by Pseudoterranova azarasi. Amer. J. Trop. Med. Hyg. 2020; 103 (1): 8.

14. Kochanowski M., Dabrowska J., Rozycki M., Karamon J., Sroka J.,Cencek T. Proteomic profiling reveals new insights into the allergens of Anisakis simplex, Pseudoterranova decipiens and Contracoecum osculatum. J. Parasitol. 2020; 106 (5): 572-588.

15. Raush R. L., Adams A. M. Natural transfer of helminths of marine origin to freshwater fishes with observations on the development of Diphyllobothrium alascense. J. Parasitol. 2020; 86 (2): 319-327.

16. Roca-Gerones X., Fisa R., Montoliu I. Biogeography of Anisakis (Anisakidae) and Hysterothylacium (Rhaphidascarididae) nematode species in consumed fish. Recent Advances in Pharmaceutical Sciences. 2018; VIII. 95-118.

17. Shults L. M. Helminths of the spotted seal, Phoca largha, from the Bering Sea. J. Wildl. Dis. 1982; 18 (1): 59-62.

18. Sonoda H., Yamamoto K., Ozeki K., Inoye H., toda S., Maehara Y. An Anisakis larva attached to early gastric cancer: report a case. Surg. Today 2015; 45 (10): 1321-1325.