Влияние кокцидиостатика байкокса на течение кокцидиоза у цыплят-бройлеров
https://doi.org/10.31016/1998-8435-2021-15-2-95-100
Аннотация
Цель исследований: идентификация обнаруженных у цыплят-бройлеров кокцидий Eimeria spp. и оценка эффективности байкокса против кокцидий.
Материалы и методы. Исследовано 20 цыплят-бройлеров в возрасте 6 недель с фермы, неблагополучной по кокцидиозу. Цыплят разделили на две равные группы. Первая группа цыплят была контрольной и им препарат не задавали. Цыплятам второй группы задавали байкокс в течение 2 сут в концентрации 25 ч/млн вместе с водой. Пробы помета цыплят-бройлеров исследовали качественно методом флотации (Willis-Schlaaf), а затем количественно методом МакМастера. Цыплят умерщвляли через 6 сут после обработки, и их средние показатели общего поражения кишечника оценивали от 0 до 4 баллов по произвольной шкале, описанной Johnson and Reid (1970).
Результаты и обсуждение. По результатам исследований выявлено шесть видов простейших рода Eimeria: E. acervulina, E. tenella, E. brunetti, E. maxima, E. mivati, E. necatrix, при этом виды E. necatrix и E. maxima были доминирующими. Виды E. mivati, E. acervulina (76,34%) локализовались в переднем сегменте кишечника, E. necatrix, E. maxima (83,34%) – в среднем сегменте тонкой кишки. E. brunetti обнаружены у 51,11% исследованных цыплят. Наиболее патогенный вид, E. tenella, паразитирующий в слепой кишке, обнаружен у 37,53% особей. Cредний показатель общего поражения кишечника в группе цыплят, получавшей байкокс, составил 0,33. Уровень загрязненности фекалий ооцистами после обработки во второй группе составил 1 (от 1 до 50 ооцист в 1 г фекалий), в контрольной группе – превышал 3, а средний показатель общего поражения кишечника – 2,5.
Об авторах
А. Балицка-РамишПольша
Кафедра биотехнологии репродукции животных и гигиены окружающей среды,
г. Щецин
Л. Лауранс
Польша
ул. Aрконска, 4, 71-455, г. Щецин
М. Батко
Польша
А. Рамиш
Польша
г. Щецин
Список литературы
1. Dagayeva А. B., Bakrieva R. М., Makhieva B. М. Eimeriosis in poultry: biology, spread and control measures in the Caspian Sea Region of the Russian Federation. Russian Journal of Parasitology. 2020; 14 (1): 29–34.
2. Doner S. Epidemiology of infection with Eimeria protozoa in vaccinated and unvaccinated broiler flocks against coccidiosis. Doctoral dissertation at SGGW Warsaw, 2018.
3. Doner S., Szeleszczuk P. Prevalence of Eimeria spp. In broiler chicken flocks in Poland. XI International Coccidiosis Conference 2014; September 2014, Dresden, Germany, s. 26-30. Explanation: 1, 2, 3, 4, intestinal sections identical to those in Fig. 1. Mean Total Lesion Score (MTLS) range: 0-4 Oocyst index: 0 1 = 1 – 50 oocysts in 1 g faeces 2 = 51 – 300 oocysts in 1 g faeces 3 = > 300 oocysts in 1 g faeces
4. Eckert J., Taylor M., Licois D., Coudret P., Catchpole J., Bucklar H. Identification of Eimeria and Isospora species and strains: Morphological and biological characteristics. In: Eckert J., Braun R., Shirley M. W. et al. Biotechnology. Guidelines on techniques in coccidioisis research office for official publications of the European Communities, 1995; Luxembourg.
5. Gaweł A., Bobusia K., Bobrek K. Identification of Eimeria spp. occurring in hens and broiler chickens in Poland, Med. Weter. 2015; 71 (6), 382-388.
6. Graat E., van der Kooij E., Frankena K., Henken A., Smeets J., Hekerman M.: Quantifying risk factors of coccidiosis in broilers using on-farm data based on a veterinary practice. Prev. Vet. Med. 1998; 33, 297-308.
7. Hafez H. M. Enteric diseases of poultry with special attention to Clostridium perfringens. Pak Vet J., 2011; 31: 175-184.
8. Haug A., Gjevre A., Thebo P., Mattsson J., Kaldhusdal M. Coccidial infections in commercial broilers: epidemiological aspects and comparison of Eimeria species identification by morphometric and polymerase chain reaction techniques. Avian Pathol. 2008; 37, 161-170.
9. Jeffers Tomas. Serendiptty: my ally in coccidiosis research „Coccidiosis and other invasive poultry diseases current challenges” Intertnational Technical Conference, 23.030.2018, Wrocław.
10. Johnson J., Reid W. M. Anticoccidial drugs: Lesion scoring techniques in batter and floor-pen experiments with chicken. Exp. Parasitol. 1970; 28, 30–36.
11. Jorgensen W., Stewart N., Jeston P., Molloy J., Blight G., Dalgliesh R.: Isolation and pathogenicity of Australian strains of Eimeria praecox and Eimeria mitis. Australian Vet. J. 1997, 75, 592-595.
12. Kucera J.: Identification of Eimeria species in Czechoslovakia. Avian Pathol. 1990; 19, 59-66.
13. Lee B., Kim W., Jeong J., Yoo J., Kwon Y., Jung B., Kwon J., Lillehoj H., Min W. Prevalence and cross-immunity of Eimeria species on Korean chicken farms. J. Vet. Med. Sci. 2010; 72, 985-989.
14. Mazurkiewicz M. Choroby drobiu. Wydawnictwo Akademii Rolniczej Wrocław 2011; 599-611.
15. Williams R., Bushell A., Reperant J., Doy T., Morgan J., Shirley M., Yvore P., Carr M., Fremont Y.: A survey of Eimeria species in commerciallyreared chickens in France during 1994. Avian Pathol. 1996; 25, 113-130.
Рецензия
Для цитирования:
Балицка-Рамиш А., Лауранс Л., Батко М., Рамиш А. Влияние кокцидиостатика байкокса на течение кокцидиоза у цыплят-бройлеров. Российский паразитологический журнал. 2021;15(2):95-100. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2021-15-2-95-100
For citation:
Balicka-Ramisz A., Laurans L., Batko M., Ramisz A. The influence of coccidiostatic Baycox on the course of coccidiosis in broiler chicken. Russian Journal of Parasitology. 2021;15(2):95-100. (In Russ.) https://doi.org/10.31016/1998-8435-2021-15-2-95-100