Комплексный контроль эймерий у цыплят-бройлеров при напольной технологии содержания в условиях промышленного производства

Цель исследований: испытать эффективность комплексного контроля экзогенных и эндогенных стадий эймерий в условиях птицефабрик при напольном содержании цыплят-бройлеров.

Материалы и методы. Работу проводили в 10 птичниках птицефабрики «Нежегольская» агрохолдинга «Белая птица» Белгородской области на протяжении одного технологического цикла производства в мае–июне 2017 г. В качестве средства для дезинвазии использовали 4%-ный раствор делеголя Pro при норме расхода 0,5 л на м² при экспозиции 2 ч. В качестве препаратов против эндогенных стадий цыплятам задавали ионофорный кормовой антибиотик салиномицин 12%-ный в рекомендованной дозе с кормом, а также толтразурил 2,5%-ный (байкокс), который задавали цыплятам в 8–10-суточном возрасте с питьевой водой в рекомендованной дозе в течение 72 ч из расчета 1 л препарата на 1000 л воды. Устанавливали исходную контаминацию птичников ооцистами эймерий, эффективность делеголя Pro и комбинированного назначения салиномицина и толтразурила цыплятам по результатам исследований проб подстилки перед и после назначения толтразурила, а также перед убоем опытной партии цыплят; оценивали эффективность комплексного контроля экзои эндогенных стадий эймерий и идентифицировали видовой состав эймерий.

Паразитологические исследования подстилки и соскобов осуществляли в условиях лаборатории ВНИИП им. К. И. Скрябина по комбинированному методу Дарлинга. В подстилке и соскобах устанавливали экстенсивность (ЭИ) и интенсивность (ИИ) эймериозной инвазии путем подсчета числа ооцист в 1 г соскобов с помощью камеры Мак Мастера. Видовой состав эймерий определяли после сбора и культивирования ооцист. Проводили морфометрию ооцист эймерий. Эффективность комплексного контроля экзогенных и эндогенный стадий кокцидий в условиях птицефабрики при напольном содержании цыплят-бройлеров определяли как интенсэффективность или процент снижения числа ооцист в пробах подстилки после убоя предыдущей и опытной партии цыплят, которую рассчитывали по формуле.

Результаты и обсуждение. В соскобах с пола 10 птичников перед дезинвазией обнаружили высокую контаминацию пола птичников ооцистами эймерий (Eimeria spp.). Средняя экстенсивность эймериозной инвазии составила 53,33%, а интенсивность – 12,23±5,15 тыс. ооцист/г соскобов. В соскобах с пола через 24 ч после обработки птичников делеголем Pro ооцист эймерий обнаружили во всех 10 птичниках, но при этом было отмечено снижение ЭИ до 49,99% и ИИ до 7,6±2,46 тыс. ооцист/г соскобов. При проведении дезинвазии ооцисты эймерий полностью уничтожить не удалось, что подтверждает недостаточность проведения борьбы только с экзогенными стадиями кокцидий. Поэтому вторым этапом комплексной программы была борьба с эндогенными стадиями эймерий. Установлено сильное загрязнение подстилки после убоя предыдущей партии цыплят. Средняя ЭИ по 10 птичникам в подстилке составила 51,66% при средней ИИ 11,96±5,97 тыс. ооцист/г. При исследовании подстилки опытной партии цыплят до дачи толтразурила средняя ЭИ составила 25%, ИИ – 6,67±6,21 тыс. ооцист/г подстилки. Средняя ЭИ в подстилке через одну неделю после дачи толтразурила 2,5%-ного составила 8,35% при ИИ 1,65 ± 1,84 тыс. ооцист/г; через две недели после дачи препарата ЭИ – 51,66% при ИИ 11,62 ± 14,46 тыс. ооцист/г; через три недели ЭИ составила 76,66%, ИИ – 8,88± ,82 тыс. ооцист/г; через четыре недели ЭИ была 81,66%, ИИ – 7,48±2,55 тыс. ооцист/г. Перед убоем опытной партии бройлеров в пробах подстилки ооцисты эймерий выделены в 9 птичниках. Следует отметить, что средняя ЭИ по 10 птичникам в подстилке составила 34,99% при ИИ – 3,56±1,34 тыс. ооцист/г, что заметно ниже аналогичных показателей после убоя предыдущей партии цыплят: ЭИ – 51,66%, ИИ – 11,96±5,97 тыс. ооцист/г. Определен видовой состав ооцист эймерий из проб подстилки через 2 и 4 недели после выпойки толтразурила 2,5%-ного: Eimeria acervulina (20%), E. brunetti (33,3%), E. maxima (33,3%), E. tenella (13,4%). Результаты изучения эффективности комплексного контроля экзогенных и эндогенных стадий кокцидий в условиях промышленной птицефабрики при напольном содержании цыплят-бройлеров показали 70,2%-ную интенсэффективность данной программы.

1. Акбаев М. Ш., Василевич Ф. И., Акбаев Р. М., Водянов А. А., Косминков Н. Е., Пашкин П. И., Ятусевич А. И. Паразитология и инвазионные болезни животных / под ред. М. Ш. Акбаева. М.: Колос, 2008. 776 с.

2. Бакунин В. А. Болезни птиц. С.-Петер., 2006. 689 с.

3. Кошкина В. И. Сравнительная оценка методов лечения при кокцидиозе цыплят // Ветеринария. 1968. № 5. С. 43–45.

4. Крылов М. В. Определитель паразитических простейших. С.-Петер., 1996. 602 с.

5. Мишин В. С., Кадникова Г. Ф. Кокцидиоз кур. Средства и методы решения проблемы // Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2011. № 3. С. 16.

6. Мурзаков Р. Р., Сафиуллин Р. Т. Эпизоотическая ситуация по эймериозу цыплят при разной технологии их выращивания в условиях Московской области // Матер. докл. науч. конф. Всерос. о-ва гельминтол. РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями животных». 2012. № 13. С. 256–260.

7. Сафиуллин Р. Т., Забашта А. П. Эффективность монлара при эймериозе цыплят // Птицеводство. 2002. № 7. С. 28–29.

8. Сафиуллин Р. Т., Мурзаков Р. Р., Ташбулатов А. А. Ущерб от кокцидиоза цыплят и эффективность мероприятий на дезинвазию // Матер. докл. науч. конф. Всерос. о-ва гельминтол. РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями животных». М., 2011. Вып. 12. С. 461–465.

9. Сафиуллин Р. Т., Мурзаков Р. Р., Ташбулатов А. А. Эффективный препарат против ооцист кикцидий – кенококс // Ветеринария Кубани. 2012. № 5. С. 21–23.

10. Сидорова К. А., Козлова С. В., Татарникова Н. А. Эймериоз цыплят-бройлеров // Птицеводческое хозяйство. Птицефабрика. М., 2011. № 9. С. 9.

11. Фисинин В. И. Состояние и развитие современного птицеводства // Аграрная тема. 2011. № 1 (18). С. 16–22.

12. Хованских А. Е., Илюшечкин Ю. П., Кириллов А. И. Кокцидиозы сельскохозяйственной птицы. Л.: Агропромиздат, 1990. 152 с.

13. Ятусевич А. И., Бирман Б. Я., Сандул А. В. Проблема эймериоза цыплят и пути ее решения // Эпизоотология, иммунобиология, фармакология и санитария. 2005. № 1. С. 11–14.

14. Chapman H. D., Jeffers T. K., Williams R. B. Forty years of monensin for the control of coccidiosis in poultry. Poultry science. 2010; 89(9): 1788–1801.

15. Duszynski D. W., Upton S. J. Cyclospora, Eimeria, Isospora and Cryptosporidium spp. Parasitic diseases of wild mammals. 2001; 2: 430–442.

16. Gharekhani J., Sadeghi-Dehkordi Z., Bahrami M. Prevalence of coccidiosis in broiler chicken farms in Western Iran. Journal of veterinary medicine. 2014; 2014: 1–4.

17. Nematollahi A., Moghaddam G., Pourabad R. F. Prevalence of Eimeria species among broiler chicks in Tabriz (Northwest of Iran). Mun. Ent. Zool. 2009; 4(1): 53–58.

18. Olanrewaju C. A., Agbor R. Y. Prevalence of coccidiosis among poultry birds slaughtered at Gwagwalada main market, Abuja, FCT, Nigeria. The International Journal of Engineering and Science. 2014; 3(1): 41–45.