Preview

Russian Journal of Parasitology

Advanced search

The Excretion Period of Triclabendazole Residual and it's Metabolites after Triclafascid Application on Sheep

https://doi.org/10.31016/1998-8435-2018-12-3-67-75

Abstract

The purpose of the research: studying the excretion period of triclabendazole residual and its metabolites after triclafascid application on productive animals. Materials and methods. Researches were carried out on 12 sheep of Romanov breed at the age of 1 year. The animals selected in the experiment were divided according to the principle of analogues into 4 groups (control and 3 experimental) for 3 animals in every slaughter period. Triclafascid was administered to the sheep of the three experimental groups on a single occasion at a therapeutic dose of 2.0 mg/kg under active ingredient (20 mg/kg of preparation) orally individually in the form of an aqueous solution by means of rubber bottle; control animals did not take a preparation. Initially, the sheep of the control group were slaughtered, and then experimental sheep were slaughtered after the application of triclafascid at 7, 14 and 21 days. Liver, kidneys, muscle tissue, heart, lungs and skin with subcutaneous fat were collected for the research. Triclabendazole content and its metabolites was determined by high performance liquid chromatography method (HPLC) with fluorometric detection. Analytes determination was performed on Agilent 1260 liquid chromatograph (USA) with a column for reverse phase HPLC Kromasil-100-3.5-C18 and a pre-column Phenomenex C18. Results and discussion. After animals dehelminthization with triclafascid at a therapeutic dose of 2.0 mg/kg, no drug residual and its metabolites were detected in muscles, fat, lungs, spleen, kidneys on the 7th day. Traces remain in all animals in the liver after 14 days. Residual amounts of triclabendazole-sulfoxide and sulfone were not found in the tissues on the 21st day of the experiment. Animals slaughtering for household needs and using of forcibly killed animals’ meat for food can be allowed after 15 days after dehelminthization.

About the Authors

M. B. Musaev
All-Russian Scientific Research Institute of Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plants - Branch of the Federal State Budget Scientific Institution “Federal Scientific Center - All-Russian Scientific Research Institute of Experimental Veterinary named after K. I. Skryabin and Y. R. Kovalenko the Russian Academy of Sciences»
Russian Federation


I. E. Shumakovich
All-Russian Scientific Research Institute of Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plants - Branch of the Federal State Budget Scientific Institution “Federal Scientific Center - All-Russian Scientific Research Institute of Experimental Veterinary named after K. I. Skryabin and Y. R. Kovalenko the Russian Academy of Sciences»
Russian Federation


M. S. Khalikov
All-Russian Scientific Research Institute of Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plants - Branch of the Federal State Budget Scientific Institution “Federal Scientific Center - All-Russian Scientific Research Institute of Experimental Veterinary named after K. I. Skryabin and Y. R. Kovalenko the Russian Academy of Sciences»
Russian Federation


N. B. Emelyanova
All-Russian Scientific Research Institute of Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plants - Branch of the Federal State Budget Scientific Institution “Federal Scientific Center - All-Russian Scientific Research Institute of Experimental Veterinary named after K. I. Skryabin and Y. R. Kovalenko the Russian Academy of Sciences»
Russian Federation


P. P. Kochetkov
Federal State Budgetary Institution“Center for Strategic Planning and Management of Medical and Biological Health Risks” of the Ministry of Health of the Russian Federation
Russian Federation


N. E. Patyukov
International Scientific Research Center for the Human Health, Animal and the Environment Protection (OOO MNIC “OZOS”)
Russian Federation


V. E. Abramov
International Scientific Research Center for the Human Health, Animal and the Environment Protection (OOO MNIC “OZOS”)
Russian Federation


References

1. Архипов И. А. Побочные действия антгельминтиков и эндэктоцидов и пути их предотвращения // Ветеринария. 1999. № 12. С. 24-25

2. Архипов И. А. Антигельминтики: фармакология и применение. Монография. М.: Россельхозакадемия, 2009. 405 с

3. Атаев A. M. Эколого-эпизоотологический анализ фасциолеза животных и совершенствование мер борьбы с ним в юго-восточном регионе Северного Кавказа: автореф. дис. ... д-ра вет. наук. 1990. 40 с

4. Бочарова М. М. Эколого-популяционный анализ трематод Dicrocoelium lanceatum Stiles et Hassal, 1896, Fasciola hepatica L., 1758 и их хозяев в условиях северных склонов Центрального Кавказа и Восточного Предкавказья: дис. ... д-ра биол. наук. 1996. 546 с

5. Демидов Н. В. Фасциолезы сельскохозяйственных животных: дис. ... д-ра вет. наук. 1963

6. Демидов Н. В. Антигельминтики в ветеринарии. М.: Колос, 1982. 367 с

7. Коляда Е. Е. Эпизоотология и терапия фасциолеза и дикроцелиоза крупного рогатого скота в Среднем Поволжье: автореф. дис. ... канд. вет. наук. М., 2004. 25 с

8. Лошкарева В. В. Маритогония трематод у крупного рогатого скота и оптимизация сроков применения антигельминтиков в условиях Среднего Предуралья: автореф. дис. ... канд. вет. наук. М., 2005. 25 с

9. Миленина М. В., Мусаев М. Б., Белова Е. Е., Новик Т. С., Абрамов В. Е. Субхроническая токсичность супрамолекулярного комплекса триклабендазола // Российский паразитологический журнал. 2017. Т. 42. Вып. 4. С. 387-391

10. Миленина М. В., Мусаев М. Б. Доклиническое тестирование нового отечественного супрамолекулярного комплекса триклабендазола «триклафасцид» на эмбриотропную активность // Российский паразитологический журнал. 2017. Т. 41. Вып. 3. С. 266-267

11. Миленина М. В., Курочкина К. Г., Мусаев М. Б. Изучение иммунотропной активности супрамолекулярного комплекса триклабендазола // Российский паразитологический журнал. 2017. Т. 41. Вып. 1. С. 82-89

12. Мусаев М. Б., Миленина М. В., Архипов И. А., Халиков С. С. и др. Эффективность супрамолекулярного комплекса триклабендазола с полимерными наполнителями при фасциолезе // Российский паразитологический журнал. 2017. Т. 41. Вып. 3. С. 271-277

13. Мусаев М. Б., Миленина М. В., Джамалова А. З., Берсанова Х. И. и др. Комиссионное испытание супрамолекулярного комплекса триклабендазола при фасциолезе // Матер. докл. междунар. конф. Всерос. о-ва гельминтол. РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». 2017. Вып. 18. С. 293-297

14. Сафиуллин Р. Т. Экономическое обоснование паразитарных болезней крупного рогатого скота // Матер, докл. науч. конф. Всерос. о-ва гельминтол. РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». 2002. Вып. 3. С. 297-300

15. Шипшев Б. М. Эпизоотология фасциолеза жвачных животных в Кабардино-Балкарской Республике и совершенствование мер борьбы с ним: дис. ... канд. вет. наук. 1998. 198 с


Review

For citations:


Musaev M.B., Shumakovich I.E., Khalikov M.S., Emelyanova N.B., Kochetkov P.P., Patyukov N.E., Abramov V.E. The Excretion Period of Triclabendazole Residual and it's Metabolites after Triclafascid Application on Sheep. Russian Journal of Parasitology. 2018;12(3):67-75. (In Russ.) https://doi.org/10.31016/1998-8435-2018-12-3-67-75

Views: 362


Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1998-8435 (Print)
ISSN 2541-7843 (Online)