Биохимический состав и картирование характерных ионов белков соматического экстракта Trichinella spiralis
https://doi.org/10.31016/1998-8435-2025-19-2-190-198
Аннотация
Цель исследований – изучение биохимического состава и картирование основных белковых пиков полного соматического экстракта личинок Тrichinella spiralis, выделенных из мышечной ткани зараженных крыс и мышей.
Материалы и методы. Эксперименты проводили на половозрелых аутбредных крысах и мышах (самцах). Для получения соматического экстракта животных заражали личинками T. spiralis внутрижелудочно из расчета 10 личинок на 1 г массы тела. Экстракт готовили из личинок трихинелл, выделенных из тушек зараженных крыс и мышей. Проводили исследование биохимического состава белкового экстракта T. spiralis, выделенного из мышечной ткани зараженных крыс; определено 25 показателей. В сравнительном аспекте проведено картирование характерных ионов белков в полных соматических экстрактах трихинелл, полученных от двух видов лабораторных животных, крыс и мышей, с использованием высокоэффективной жидкостной хроматографии с тандемной масс-спектрометрией (ВЭЖХ-МС/МС).
Результаты и обсуждение. В полном соматическом экстракте T. spiralis установлено присутствие билирубина общего и прямого, мочевины, креатинина, общего белка, глобулина, глюкозы, триглицеридов и электролитов; также выявлена активность ряда ферментов (АСТ, АЛТ, щелочной фосфатазы и гамма-глутамилтрансфераз). Все детектированные метаболиты находились на более низком уровне (или отсутствовали) по сравнению с референсными значениями крови здоровых крыс, за исключением более высокой концентрации креатинина в экстракте трихинелл. Результаты картирования характерных ионов белков в двух образцах соматического экстракта, полученного из личинок, выделенных из мышечной ткани зараженных крыс и мышей, свидетельствуют о высоком сходстве, что позволяет сделать вывод о структурной близости белков данных экстрактов.
Об авторах
Г. В. КоноваловаРоссия
Коновалова Гелла Владимировна, соискатель лаборатории экспериментальной терапии, заведующий отделом доклинических исследований ВГНКИ
Москва
С. В. Алешин
Россия
Алешин Сергей Валерьевич, кандидат фармацевтических наук, научный сотрудник, главный специалист, химик-аналитик отдела доклинических исследований ВГНКИ
Москва
Список литературы
1. Акибеков О. С., Жагипар Ф. С., Сыздыкова А. С., Гаджимурадова А. М., Аканова Ж. Ж. Получение экскреторно-секреторного и соматического антигенов Trichinella spiralis // Вестник науки Казахского Агротехнического Университета имени С. Сейфулина. 2022. 2-2 (113). C. 133-145. https://doi.org/10.51452/kazatu.2022.2(113).1035
2. Астафьев Б. А., Яроцкий Л. С., Лебедева М. Н. Экспериментальные модели паразитозов в биологии и медицине. М.: Наука, 1989. 278 с. 2025;19(2):190-198
3. Бережко В. К., Новик Т. С., Ковешникова Е. И., Данилова Т. И., Написанова Л. А., Тхакахова А. А., Чукина С. И., Камышников О. Ю., Руднева О. В. Trichinella spiralis как ингибитор пролиферации опухолевых клеток. // Труды Всероссийского НИИ экспериментальной ветеринарии им. Я. Р. Коваленко. 2018. Т. 80. № 1. С. 101-110. https://doi.org/10.30917/ATT-PRINT-2018-1
4. Кротов А. И. Основы экспериментальной терапии гельминтозов. М.: Медицина, 1973. 272 с. 5. Новик Т. С., Ковешникова Е. И., Бережко В. К., Камышников О. Ю., Чукина С. И., Данилова Т. И., Написанова Л. А., Тхакахова А. А., Успенский А. В., Архипов И. А. Патент РФ, RU 2 671 632 C1. Применение белкового экстракта в качестве антипролиферативного и цитотоксического средства. Опубликовано 06.11.2018. Бюллетень № 31.
5. Одоевская И. М., Кудряшова И. Б., Курносова О. П., Рекстина В. В., Руденская Ю. А., Зиганшин З. Х., Калебина Т. С. Сравнительный анализ экскреторно-секреторных белков мышечных личинок Trichinella spiralis и Trichinella pseudospiralis // Russian Journal of Nematology. 2018. 26 (1). C. 63-70.
6. Одоевская И. М., Курносова О. П. Сравнительный иммунохимический анализ полного соматического фракционированного и экскреторно-секреторных белков и антигенов личинок T. spiralis // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2007. № 2. С. 24-29.
7. Aung T. N., Qu Z., Kortschak R. D., Adelson D. L. Understanding the effectiveness of natural compound mixtures in cancer through their molecular mode of action. International Journal of Molecular Sciences. 2017; 18: 656. https://doi.org/10.3390/ijms18030656.
8. Berezhko V. K., Kalinnikova V. D., Rudneva O. V., Napisanova L. A., Sasicova M. R. Evaluation of Trichinella spiralis larvae extract as an inhibitor of antiproliferative effect on human breast cancer cell culture - MCF-7. Scientia Parasitologica. Abstract Book. 2019; 123-124. https://doi.org/10.30917/ATT-PRINT-2018-1
9. Dehelean C. A., Marcovici I. Soica C., Mioc M., Coricovac D., Lurciuc S., Cretu O. M., Pinzaru I. Plant-Derived Anticancer Compounds as New Perspectives in Drug Discovery and Alternative T herapy. Molecules. 2021; 26: 1109. https://doi.org/10.3390/molecules26041109.
10. Guan Y., Xu X., Liu X., Sheng A., Jin L., Linhardt R. J., Chi L. Comparison of low-molecular-weight heparins prepared from bovine lung heparin and porcine intestine heparin. Journal of pharmaceutical sciences. 2016; 105 (6): 1843-1850. https://doi.org/10.1016/j.xphs.2016.03.037
11. Jerry Kaneko J., Harvey J. W., Bruss M. L. Clinical Biochemistry of Domestic Animals, Sixth Edition. 1997. https://doi.org/10.1016/B978-0123963055/50032-4
12. Li D., Chi L., Jin L., Xu X., Du X., Ji S., Chi L. Mapping of low molecular weight heparins using reversed phase ion pair liquid chromatography mass spectrometry. Carbohydrate polymers. 2014; 99: 339-344. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2013.08.074
13. Lin S. R., Chang C. H., Hsu C. F., Tsai M. J., Cheng H., Leong M. K., Sung P. J., Chen J. C., Weng C. F. Natural compounds as potential adjuvants to cancer therapy: Preclinical evidence. British Pharmacological Society. 2020; 177: 1409 1423. https://doi.org/10.1111/bph.14816
14. Newman D. J., Cragg G. M. Natural Products as Sources of New Drugs over the Nearly Four Decades from 01/1981 to 09/2019. Journal of Natural Products. 2020; 83 (3): 770–803. https://doi.org/10.1021/acs.jnatprod.9b01285
15. Ruenchit P., Reamtong O., Khowawisetsut L., Adisakwattana P., Chulanetra M., Kulkeam K., Chaicumpa W. Peptide of Trichinella spiralis Infective Larval Extract That Harnesses Growth of Human Hepatoma Cells. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2022; 12: 882608. https://doi.org/10.3389/fcimb.2022.882608
16. Sadr S., Yousefsan Z., Simab P. A. et al. Trichinella spiralis as a Potential Antitumor Agent: An Update. World Veterinary Journal. 2023; 13 (1): 65-74. https://doi.org/10.54203/scil.2023.wvj7
Рецензия
Для цитирования:
Коновалова Г.В., Алешин С.В. Биохимический состав и картирование характерных ионов белков соматического экстракта Trichinella spiralis. Российский паразитологический журнал. 2025;19(2):190-198. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2025-19-2-190-198
For citation:
Konovalova G.V., Aleshin S.V. Biochemical composition and mapping of definitive protein ions of a somatic extract from Trichinella spiralis. Russian Journal of Parasitology. 2025;19(2):190-198. (In Russ.) https://doi.org/10.31016/1998-8435-2025-19-2-190-198