Совершенствование прижизненной и посмертной диагностики трихинеллеза у Gallus gallus при экспериментальном заражении Trichinella pseudospiralis

Цель исследований – изучить распределение личинок Trichinella pseudospiralis в различных мышцах экспериментально инвазированных кур-несушек (Gallus gallus). Проанализировать имеющиеся методики для посмертной диагностики трихинеллеза методами трихинеллоскопии (КТ) и осадка после переваривания (пептолиз), вызванного T. pseudospiralis у птиц с уточнением расположения данных личинок в мышечной ткани и выявлением особо поражаемых групп мышц.

Материалы и методы. Методом аналогов сформированы опытные группы, которым вводили изолят личинок T. pseudospiralis в дозе 2 лич. /г массы тела. Личинки T. pseudospiralis, используемые для экспериментального заражения птицы, первоначально выделены из мышечной ткани диких Кошачьих, и поддерживались на лабораторных животных. С целью определения числа личинок T. pseudospiralis при распределении их в мышцах птиц через 4,5 мес. после экспериментального заражения кур-несушек опытной группы подвергли эвтаназии. В диагностических целях исследовали мышцы головы и пищевода, межреберные, ножки диафрагмы; применяли метод КТ с изготовлением фотографий на оборудовании Vision Bio, 2014. Отдельно исследовали мышцы груди и шеи птиц путем их препарирования. Объекты исследования микроскопировали при увеличении × 20 и × 80. Полученные данные обрабатывали с использованием стандартных пакетов программ MS Excel и Statgraphics.

Результаты и обсуждение. Методом КТ обнаружено, что личинки T. рseudospiralis располагаются в мышцах у птиц крайне неоднородно. Это отмечали как при изготовлении срезов из одной локализации в пределах одной группы мышц, так и в различных группах исследуемых мышц. Наибольшее число личинок у кур-несушек обнаружено в мышцах головы и языка (3,70±0,50 и 5,20±0,30 экз.) в одном срезе, меньшее – в мышцах шеи и межреберных. Методы КТ и пептолиза ткани мышц в искусственном желудочном соке, используемые для постмортальной диагностики трихинеллеза, вызванного T. spiralis и T. pseudospiralis, достаточно надежны, позволяют обнаружить источники инвазии и предотвратить развитие опасного зооноза у человека. Данные методы можно применять для исследований на трихинеллез, в том числе, при наработке антигена, изучения чувствительности личинок к антигельминтикам и в качестве лабораторных моделей.

1. Гаркави Б. Л. Трихинеллез, вызываемый Тrichinella pseudospiralis (морфология и биология возбудителя, эпизоотология и эпидемиология, диагностика, меры борьбы и профилактика) // Российский паразитологический журнал. 2007. № 2. С. 35-116.

2. Жданова О. Б., Ашихмин С. П., Окулова И. И., Бельтюкова З. Н. Распространенность T. spiralis и некоторые особенности профилактики трихинеллеза в Кировской области // Здоровье населения и среда обитания. 2017. № 1 (286). С. 46-49.

3. Жданова О. Б., Окулова И. И., Зарубин Б. Е., Домский И. А., Успенский А. В., Написанова Л. А., Россохин Д. В. Морфологические особенности и распределение личинок трихинелл в мышцах у рыси // Российский паразитологический журнал. 2021. Т. 15. № 2. С. 17-23. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2021-15-2

4. Мартусевич А. К., Жданова О. Б. Исследование зависимости кристаллогенной активности биосреды от интенсивности экспериментальной инвазии Тrichinella spiralis // Российский паразитологический журнал. 2013. № 2. С. 64-71.

5. Написанова Л. А., Жданова О. Б., Успенский А. В., Мартусевич А. К., Клюкина Е. С. К вопросу совершенствования технологий диагностики трихинеллеза у свиней // Свиноводство. 2020. № 6. С. 57-61. https://doi.org/10.37925/0039713X-2020-6-57-61

6. Одоевская И. М. Значение птиц в диссеминации личинок Тrichinella spp. в прибрежных и водных биоценозах // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2011 № 1. С. 12-16.

7. Одоевская И. М. О роли птиц в эпизоотологии трихинеллеза морских млекопитающих Арктического заполярья // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2010. № 3. С. 32-37.

8. Успенский А. В., Жданова О. Б., Андреянов О. Н., Написанова Л. А., Малышева Н. С. Трихинеллоскопия туш домашних и диких животных // Российский паразитологический журнал. 2021. Т. 15. № 3. С. 71-75. https://doi.org/10.31016/19988435-2021-15-3

9. Успенский А. В., Арисов М. В., Гулюкин М. И., Скворцова Ф. К. Особенности ограничительных мероприятий при трихинеллезе // Российский паразитологический журнал. 2019. Т. 13. № 3. С. 88-92. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2019-13-3

10. Файнфельд И. А. Стресс и резистентность животных к паразитам. Благовещенск, 1988. 86 с.

11. Файнфельд И. А. Трихинеллез. Биробиджан: Дальневосточная государственная социально гуманитарная академия, 2009. 96 с.

12. Blair L. S., Campbell W. C. Reversibility of thiabendazole-induced sterilization of Trichinella spiralis. Wiadomości parazytologiczne, 1971; 17 (5): 641-644.

13. Campbell W. C., Blair L. S. Chemotherapy of Trichinella spiralis Infections (a review). Experimental Parasitology, 1974; 35 (2): 304-334.

14. Finefield I. A. The effect of helmatac on different species of Trichinella. Abstracts of papers, Third International Conference on Trichinellosis. Miami Beach, Florida, 1972; 71-72.

15. Finefield I. A. The effect thiabendazole in human trichinellosis. Abstracts of papers, Forth International Conference on Trichinellosis. Poznan, 1976; 16-17.

16. Kim C. W., Pawłowski Z. S. Trichinellosis: proceedings of the Fourth International Conference on Trichinellosis, Poznań, Poland. 1976; 519-523.

17. Goździk K., Cabaj W., Odoevskaya I. M., Movsesyan S. O. Мolecular identification of trichinella isolates from wildlife animals of the Russian Аrctic territories. Helminthologia. 2017; 54 (1): 11-16.

18. Mestecky J. The common mucosal immune system and current strategies for induction of immune responses in external secretions. Journal of Clinical Immunology. 1987; 7: 265–276.