Опыт освобождения лабораторных крыс от возбудителей паразитарных болезней в виварии открытого типа содержания

Цель исследований – испытать разные схемы дегельминтизации лабораторных крыс при заражении цестодами Rodentolepis nana и нематодами Syphacia muris и оценить значение мероприятий комплексной дезинвазии среды содержания. Описан практический опыт освобождения животных (эрадикация гельминтов) в виварии открытого типа содержания.
Материалы и методы. Проведены опыты по изучению эффективности антигельминтиков и схем их применения при цестодозной и нематодозной инвазиях у лабораторных крыс. В первом опыте для лечения крыс, зараженных R. nana, использовали празиквантел в дозе 10 мг/кг. Во втором опыте оценивали сравнительную эффективность фенбендазола, албендазола и пирантела при сифациозе в рекомендованных дозировках 20, 10 и 12,5 мг/кг соответственно. Каждый препарат задавали перорально, индивидуально, дважды с интервалом 7 сут. В третьем опыте испытывали разные схемы лечения сифациоза фенбендазолом. Одним группам крыс препарат задавали перорально индивидуально через пищеводный зонд в дозе 20 мг/кг один раз в день 7 сут подряд. Другим группам фенбендазол задавали ежедневно с кормом в течение 7 сут (150 мг фенбендазола на 1 кг корма). Во всех трех опытах все животные были разделены на группы, в клетках которых проводили комплекс дополнительных дезинвазионных мероприятий, и содержавшихся в клетках без дезинвазии.
Результаты и обсуждение. Празиквантел показал 100%-ную эффективность при однократной даче в дозе 10 мг/кг при терапии R. nana. У животных без дополнительных дезинвазионных процедур, начиная с 14-х суток после дачи препарата, были снова зарегистрированы яйца цестод. В группе животных с дезинвазионными мероприятиями на протяжении опыта возбудители выявлены не были. Двукратное применение фенбендазола, альбендазола и пирантела в рекомендуемых дозировках при сифациозе крыс не привело к освобождению животных от нематод. Дезинвазия не повлияла на полученные результаты. Фенбендазол при ежедневном применении в течение 7 сут обеспечил освобождение животных от гельминтов. Однако, на 7-е сутки после окончания терапии яйца сифаций снова обнаруживали в группах, получавших препарат индивидуально внутрижелудочно через зонд, независимо от того, проводилась ли в их клетках дезинвазия. Животные, получавшие фенбендазол с кормом и у которых проводили регулярно дезинвазию, оставались свободными от нематод на протяжении всего опыта вплоть до отмены дополнительных дезинвазионных мероприятий. При отсутствии дезинвазии выделение яиц гельминтов зарегистрировано на 14-е сутки после окончания терапии.

1. Адениль Д. А. Гельминтофауна лабораторных и синантропных грызунов, меры борьбы с основными гельминтозами в условиях города Москвы и Московской области: автореф. дис. … канд. вет. наук. Москва, 2001. 17 с.

2. Василевич Ф. И., Малахова Н. А. Поиск эффективных средств и способов лечения оксиуратозов лабораторных животных // Вестник ОрелГАУ. 2011. № 1. С. 34-36.

3. Климова Е. С., Бабинцева Т. В. Паразитофауна лабораторных грызунов // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. 2019. Т. 240, № 4. С. 105-108.

4. Масленникова О. В., Ерофеева В. В., Пухлянко В. П. Сифациоз грызунов и его эколого-эпидемиологическое значение // Фундаментальные исследования. 2014. № 9-7. С. 1542-1544.

5. Панова О. А., Курносова О. П., Сысоева Н. Ю., Полухина Д. Н., Сергеева Н. А., Корчагина А. Ю. Паразитологическое обследование лабораторных крыс // Вестник Вятской ГСХА. 2020. № 4 (6).

6. Arias J. L., Lopez-Viota M., Clares B., Ruiz M. A. Stability of fenbendazole suspensions for veterinary use correlation between zeta potential and sedimentation. Eur. J. Pharm. Sci. 2008; 45: 257-262. doi: 10.1016/j.ejps.2008.04.008.

7. Baker D. G. Natural pathogens of laboratory mice, rats, and rabbits and their effects on research. Clin. Microbiol. Rev. 1998; 11: 231-266. doi: 10.1128/CMR.11.2.231.

8. Baker D. G. Flynn’s parasites of laboratory animals. 2nd ed. / David G. Baker (editor-in-chief). Blackwell Publishing. 2007; 814.

9. Barron S., Baseheart B. J., Segar T. M., Deveraux T., Willford J. A. The behavioral teratogenic potential of fenbendazole: a medication for pinworm infestation. Neurotoxicol. Teratol. 2000; 22: 871-877. doi: 10.1016/s0892-0362(00)00102-1.

10. Bazzano T., Restel T. I., Pinto R. M., Gomes D. C. Patterns of infection with the nematodes Syphacia obvelata and Aspiculuris tetraptera in conventionally maintained laboratory mice. Mem. Inst. Oswaldo Cruz – Rio de Janeiro. 2002; 97 (6): 847-853. doi: 10.1590/S0074-02762002000600017

11. Beyhan Y., Gurler T., Bolukbas C., Acici M., Umur S. Helminths of some laboratory animals detected by necropsy and fecal examination. Turkish Society for Parasitology. 2010; 34: 98-101.

12. Boivin G. P., Ormsby I., Hall J. E. Eradication of Aspiculuris tetraptera using fenbendazolemedicated food. Contemp. Top. Lab. Anim. Sci. 1996; 35: 69-70.

13. Coghlan L. G., Lee D. R., Psencik B., Weiss D. Practical and effective eradication of pinworms (Syphacia muris) in rats by use of fenbendazole. Lab. Anim. Sci. 1993; 43: 481-487.

14. Dix J., Astill J., Whelan G. Assessment of methods of destruction of Syphacia muris eggs. Lab. Anim. 2004; 38: 11–16. doi: 10.1258/00236770460734344.

15. Hoag W. G. Oxyuriasis in laboratory mouse colonies. Am. J. Vet. Res. 1961; 22: 150-153.

16. Huerkamp M. J., Benjamin K. A., Zitzow L. A. Fenbendazole treatment without environmental decontamination eradicates Syphacia muris from rats in a large, complex research institution. Contemporary topics in laboratory animal science. Am. Assoc. for Lab. Animal Sci. 2000; 39 (3): 9-12.

17. Jackson T. A., Hall J. E., Boivin G. P. Ivermectin toxicity in multiple transgenic mouse lines. Lab. Anim. Pract. 1998; 31: 37-41.

18. Katiyar J. C., Sen A. B. Occurrence of histamine in the intestine of rats harboring cysticercoids of Hymenolepis nana. Indian J. Exp. Biol. 1970; 8: 191–193.

19. Katiyar J. C., Tangri A. N., Ghatak S., Sen A. B. Serum protein pattern of rats during infection with Hymenolepis nana. Indian J. Exp. Biol. 1973; 11: 188–190.

20. Lacey E., Brady R. L., Prichard R. K., Watson T. R. Comparison of inhibition of polymerisation of mammalian tubulin and helminth ovicidal activity by benzimidazole carbamates. Vet. Parasitol. 1987; 23: 105–119. doi: 10.1016/0304-4017(87)90029-X

21. Lankas G. R., Cartwright M. E., Umbenhauer D. P-glycoprotein deficiency in a subpopulation of CF-1 mice enhances avermectin-induced neurotoxicity. Toxicol. Appl. Pharmacol. 1997; 143: 357-365.

22. Lankas G. R., Minsker D. H., Robertson R. T. Effects of ivermectin on reproduction and neonatal toxicity in rats. Food Chem. Toxicol. 1989; 27: 523-529.

23. Le Blanc S. A., Faith R. E., Montgomery C. A. Use of topical ivermectin treatment for Syphacia obvelata in mice. Lab. Anim. Sci. 1993; 43: 526-528.

24. Lewis J. W., D’Silva J. The life-cycle of Syphacia muris Yamaguti (Nematoda: Oxyuroidea) in the laboratory rat. J. Helminthol. 1986; 60: 39–46.

25. Lübcke R., Hutcheson F. A. R., Barbezat G. O. Impaired intestinal electrolyte transport in rats infested with the common parasite Syphacia muris. Dig. Dis. Sci. 1992; 37: 60–64. doi: 10.1007/BF01308343

26. Lytvynets A., Langrová I., Lachout J., Vadlejch J., Fučíková A., Jankovská I. Drinking water ivermectin treatment for eradication of pinworm infections from laboratory rat colonies. Helminthologia. 2010; 47. 233–237. https://doi.org/10.2478/s11687-010-0036-5

27. Najafi F., Rezaie S., Kia E., Mobedi I., Mahmoudi M., Salimi M., Hasanpour H., Makki M., Mowlavi G. Intestinal helminths in laboratory mice and rats in four research centers, Tehran, Iran. J. Med. Microbiol. Infec. Dis. 2014; 2 (4): 130-132.

28. Neto de Sousa J., Carvalho E., Levenhagen, Marcelo L., Chaves, L., Costa-Cruz J. Diagnosis of the pinworm Syphacia muris in the Wistar rat Rattus norvegicus. J. Helminthol. 2014; 1: 1-4. doi: 10.1017/S0022149X14000753.

29. Niwa A., Miyazato T. Enhancement of intestinal eosinophilia during Hymenolepis nana infection in mice. J. Helminthol. 1996; 70: 33–41.

30. Paul A. J., Tranquilli W. J., Seward R. L., Todd K. S., Di Pietro J. A. Clinical observations in collies given ivermectin orally. Am. J. Vet. Res. 1987; 48: 684-685.

31. Perec-Matysiak A., Okulewicz A., Hildebrand J., Zaleśny G. Helminth parasites of laboratory mice and rats. Wiad Parazytol. 2006; 52 (2): 99-102.

32. Plachý V., Litvinec A., Langrová I., Horáková B., Sloup V., Jankovská I., Vadlejch J., Čadková Z., Borkovcová M. The effect of Syphacia muris on nutrient digestibility in laboratory rats. Lab. Anim. 2016; 50 (1): 39-44. doi: 10.1177/0023677215577038.

33. Pritchett K. R., Johnston N. A. A review of treatments for the eradication of pinworm infections from laboratory rodent colonies. Contemp. Top. Lab. Anim. Sci. 2002; 41 (2): 36–46.

34. Sanad M. M. Effect of Hymenolepis nana on the protein and lipid in the intestinal mucosal cells of mice. J. Egypt. Soc. Parasitol. 1991; 21: 75–80.

35. Sato Y., Ooi H. K., Nonaka N., Oku Y., Kamiya M. Antibody production in Syphacia obvelata infected mice. J. Parasitol. 1995; 81: 559-562.

36. Skopets B., Wilson R. P., Griffith J. W., Lang C. M. Ivermectin toxicity in young mice. Lab. Anim. Sci. 1996; 46: 111- 112.

37. Stone W. B., Manwell R. D. Potential helminth infections in humans from pet or laboratory mice and hamsters. Public Health Rep. 1966; 81 (7): 647-653.

38. Sueta T., Miyoshi I., Okamura T., Kasa N. Experimental eradication of pinworms (Syphacia obvelata and Aspiculuris tetraptera) from mice colonies using ivermectin. Exp. Anim. 2002; 51: 367–373. doi: 10.1538/expanim.51.367

39. Taffs L. E. Pinworm infections in laboratory rodents: a review. Lab. Anim. 1976; 10: 1–13.

40. West W. L., Schofield J. C., Bennett B. T. Efficacy of the "micro-dot" technique for administering topical 1% ivermectin for the control of pinworms and fur mites in mice. Contemp. Top. Lab. Anim. Sci. 1992; 31: 7-10.

41. Zajac A. M., Conboy G. A., Little S. E., Reichard M. V. Veterinary clinical parasitology. 9rd edn. WileyBlackwell, Chichester, 2021; 432.

42. Zenner L., Regnault J. R. Ten-year long monitoring of laboratory mouse and rat colonies in French facilities: a retrospective study. Lab. Anim. 2000; 34: 76-83. https://doi.org/10.1258/002367700780577957.