Сравнительная диагностическая эффективность микроскопии, комбинированной флотации и полимеразной цепной реакции для выявления Giardia spp. у собак и кошек

Цель исследований – провести сравнительную диагностическую эффективность микроскопии, комбинированного флотационного метода и полимеразной цепной реакции (ПЦР), используемых для выявления Giardia spp. у собак и кошек.
Материалы и методы. Сравнение эффективности трех методов выявления Giardia spp. провели на 60 пробах фекалий от собак и кошек из ветеринарной лаборатории «Зайцев +» и «Пастер».
Результаты и обсуждение. Наибольшая диагностическая эффективность установлена у ПЦР – 78,3%; диагностическая эффективность комбинированной флотации составила 68,3%; наименьшая диагностическая эффективность установлена у метода микроскопии – 43,3%. Комбинированный флотационный метод выявления гиардий широко используется в лабораторной практике, так как позволяет помимо гиардий выявлять других кишечных паразитов. Микроскопия – наиболее быстрый и простой метод для выявления не только гиардий, но и других кишечных паразитов.

1. Курносова О. П. Паразитарные заболевания домашних собак и кошек в мегаполисе Москва // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2009. № 4. С. 31-35.

2. Сергиев В. П., Лобзин Ю. В., Козлова С. С. Паразитарные болезни человека. С.-Петербург, 2006. С. 124-131.

3. Adаm R. Biology of Giardia lamblia. Clin. Microbiol. Rev. 2001;14 (3): 447–475. https://doi.org/org/10.1128/CMR.14.3.447-475.2001

4. Adell-Aledón M., Köster P. C., de Lucio A., Puente P., Hernández-de-Mingo M., Sánchez-Thevenet P., DeaAyuela M. A., Carmena D. Occurrence and molecular epidemiology of Giardia duodenalis infection in dog populations in eastern Spain. Veterinary Research. 2018; 14 (1): 26. https://doi.org/10.1186/s12917-018-1353-z

5. Agresti F., Berrilli M., Maestrini I., Guadano Procesi E., Loretti N., Perrucci V. Prevalence, Risk Factors and Genotypes of Giardia duodenalis in Sheltered Dogs in Tuscany (Central Italy). Pathogens. 2021; 11 (1): 12. https://doi.org/10.3390/pathogens11010012.

6. Ahmad A., Asmaa M., Kady E., Hassan T. Genotyping of Giardia duodenalis in children in upper Egypt using assemblage- specific PCR technique. PLoS One. 2020; 15 (10): e0240119. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0240119.

7. Balderrama-Carmona A. P., Gortáres-Moroyoqui P., Morán-Palacio E. F., Ulloa-Mercado R. G., Díaz-Tenorio L. M., Leyva-Soto L. A. RodriguezMorales A. J. Risk Assessment for Giardia in Environmental Samples. In book: In Current Topics in Giardiasis. 2017; 147–164. https://doi.org/10.5772/intechopen.70805.

8. Ballweber L. R., Xiao L. H., Bowman D. D., Kahn G., Cama V. A. Giardiasis in dogs and cats: update on epidemiology and public health significance. Trends Parasitol. 2010; 26 (4): 180-189. https://doi.org/10.1016/j.pt.2010.02.005.

9. Blanciardi P., Papini R., GlulianiI G., Cardini G. Prevalence of Giardia antigen in stool samples from dogs and cats. Revue Méd. Vét. 2004; 155 (8-9): 417-421.

10. Bouzid M., Halai K., Jeffreys D., Hunter P. R. The prevalence of Giardia infection in dogs and cats, a systematic review and meta-analysis of prevalence studies from stool samples. Veterinary Parasitology. 2015; 207 (3-4): 181-202. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2014.12.011.

11. Carlin E. P., Bowman D. D., Scarlett J. M., Garrett J., Lorentzen L. Prevalence of Giardia in symptomatic dogs and cats throughout the United States as determined by the IDEXX SNAP Giardia test. Veterinary Therapeutics. 2006; 7 (3): 199-206.

12. Demelash K., Abebaw M., Negash A., Alene B., Zemene M., Metadel Tilahun. A Review on Diagnostic Techniques in Veterinary Helminthоlogy Nature and Science. 2016; 14 (7): 109-118. https://doi.org/10.7537/marsnsj140716.15.

13. Elmendorf H., Dawson S., McCaffery J. The cytoskeleton of Giardia lamblia. Int. J. Parasitol. 2003; 33 (1): 3-28. https://doi.org/10.1016/s0020-7519(02)00228-x.

14. Feng Y., Xiao L. Zoonotic Potential and Molecular Epidemiology of Giardia Species and Giardiasis. American Society for Microbiology Clinical Microbiology Reviews. 2011; 24 (1): 110-140. https://doi.org/org/10.1128/CMR.00033-10.

15. Gates M. C., Thomas J. Nolan Comparison of Passive Fecal Flotation Run by Veterinary Students to ZincSulfate Centrifugation Flotation Run in a Diagnostic Parasitology Laboratory. J. of Parasitology. 2009; 95 (5): 1213-1214. https://doi.org/org/10.1645/GE-2058.1.

16. Geurden T., Berkvens D., Casaert S., Vercruysse J., Claerebout E. A Bayesian evaluation of three diagnostic assays for the detection of Giardia duodenalis in symptomatic and asymptomatic dogs. Vet. Parasitol. 2008; 157 (1-2): 14-20. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2008.07.002.

17. Giangaspero A., Berrilli F., Brandonisio O. Giardia and Cryptosporidium and public health: the epidemiological scenario from the Italian perspective. Parasitol. Res. 2007; 101: 1169–1182. https://doi.org/10.1007/s00436-007-0598-4.

18. Hussein E. M., Ismail O. A., Mokhtar A. B., Mohamed S. E., Saad R. M. Nested PCR targeting intergenic spacer (IGS) in genotyping of Giardia duodenalis isolated from symptomatic infected Egyptian school children. Parasitol. Res. 2017; 116 (2): 763–771. https://doi.org/10.1007/s00436-016-5347-0.

19. Jiménez-Cardoso E., Eligio-García L., CortésCampos A., Cano-Estrada A. Genotyping of Giardia intestinalis isolates from dogs by analysis of gdh, tpi, and bg genes. In books: Parasitology. 2012; 67-76. https://doi.org/10.5772/38326.

20. Kurnosova О. P., Arisov M. V., Odoyevskaya I. M. Intestinal parasites of pets and other house-kept animals in Moscow. Helmintologia. 2019; 56 (2): 108-117. https://doi.org/10.2478/helm-2019-0007.

21. Kurnosova O., Odoevskaya I., Khrustalev A., Petkova S., Dilcheva V. Comparative efficacy of different diagnostic methods for detection of Giardia (Gardia) in animals. Compt. rends Acad. bulg. Sci. 2017; 70 (3): 443-452.

22. Marshall M. M., Naumovitz D., Ortega Y., Sterling C. R. Waterborne protozoan pathogens. Clin. Microbiol. Rev. 1997; 10: 67–85. https://doi.org/10.1128/CMR.10.1.67.

23. Mircean V., Györke A., Cozma V. Prevalence and risk factors of Giardia duodenalis in dogs from Romania. Vet. Parasitol. 2012; 184 (2-4): 325-329. doi: 10.1016/j.vetpar.2011.08.022. Epub 2011 Aug 19.

24. Molina N., Polverino D., Milvielle M., Basualdo J. PCR amplification of triosephosphate isomerase gene of Giardia lamblia in formalin-fixed feces. Rev. Latinoam. Microbiol. 2007; 49 (1-2): 6-11.

25. Mravcova K., Strkolcova G., Goldova M. The Prevalence and Assemblages of Giagdia Duodenalis in Dogs: A Systematic Review in Europe. Folia Veterinaria. 2019; 63 (4): 38-45. https://doi.org/10.2478/fv-2019-0036.

26. Nikolic A., Dimitijevic S., Djurkovic Diakovic O., Bobic B., Maksimovic Mihajlovic O. Giardiasis in dogs and cats in the Belgrade area. Acta Vet. Beograd. 2002; 52: 43-47. https://doi.org/10.2298/AVB0201043N.

27. Olson M. E., Leonard N. J., Strout J. Prevalence and diagnosis of Giardia infection in dogs and cats using a fecal antigen test and fecal smear. The Canadian Vet. J. 2010; 51 (6): 640-642.

28. Paradies P., Iarussi F., Paradies P., Iarussi F., Sasanelli M., Capogna A., Lia R., Zucca D., Greco B., Cantacessi C., Otranto D. Otranto Occurrence of strongyloidiasis in privately owned and sheltered dogs: clinical presentation and treatment outcome. Parasites & Vectors. 2017; 10: 345. https://doi.org/10.1186/s13071-017-2275-5.

29. Piekara-Stępińska A., Piekarska J., Gorczykowski M., Bania J. Genotypes of Giardia duodenalis in Household Dogs and Cats from Poland. Acta Parasitol. 2021; 66 (2): 428-435. https://doi.org/10.1007/s11686-020-00292-1.