vniigisРоссийский паразитологический журналRussian Journal of Parasitology1998-84352541-7843ВНИИП – филиал ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН10.31016/1998-8435-2025-19-2-181-189vniigis-1307Research ArticleБИОХИМИЯ, БИОТЕХНОЛОГИЯ И ДИАГНОСТИКАBIOCHEMISTRY, BIOTECHNOLOGY AND DIAGNOSTICSСовершенствование прижизненной и посмертной диагностики трихинеллеза у Gallus gallus при экспериментальном заражении Trichinella pseudospiralisImproving life-time and postmortem diagnostics of trichinellosis in Gallus gallus in experimental infection with Trichinella pseudospiralishttps://orcid.org/0009-0009-4038-7143ЖдановаО. Б.ZhdanovaO. B.

Жданова Ольга Борисовна, доктор биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории паразитарных зоонозов

Москва

Киров

Researcher ID: R-5601-2019

Scopus ID: 55912373700

Zhdanova Olga B., Doctor of Biological Sciences, Senior Researcher of the Laboratory of Parasitic Zoonosis

Moscow

Kirov

Researcher ID: R-5601-2019

Scopus ID: 55912373700

oliabio@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0001-9115-9890УспенскийА. В.UspenskyA. V.

Успенский Александр Витальевич, доктор ветеринарных наук, профессор, член-корреспондент РАН, заведующий лабораторией паразитарных зоонозов

Москва

Researcher ID: Q-2754-2019

Scopus ID: 57195472164

Uspensky Aleksandr V., Doctor of Veterinary Sciences, Professor, Corresponding Member of the Russian Academy of Sciences, Head of the Laboratory of Parasitic Zoonosis

Moscow

Researcher ID: Q-2754-2019

Scopus ID: 57195472164

uspenskii@vniigis.ruhttps://orcid.org/0009-0005-1781-2501РусскихА. И.RusskikhA. I.

Русских Арина Игоревна, аспирант, лаборант-исследователь лаборатории паразитарных зоонозов

Москва

Russkikh Arina I., Postgraduate Student, Laboratory Assistant Researcher of the Laboratory of Parasitic Zoonosis

Moscow

russkikh-arina17@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0003-3357-9322АндреяновО. Н.AndreyanovO. N.

Андреянов Олег Николаевич, доктор ветеринарных наук, ведущий научный сотрудник лаборатории паразитарных зоонозов

Москва

Researcher ID: U-8168-2018

Scopus ID: 55912519600

Andreyanov Oleg N., Doctor of Veterinary Sciences, Leading Researcher of the Laboratory of Parasitic Zoonosis

Moscow

Researcher ID: U-8168-2018

Scopus ID: 55912519600

andreyanov@vniigis.ruhttps://orcid.org/0000-0002-4659-5439МалышеваН. С.MalyshevaN. S.

Малышева Наталья Семеновна, доктор биологических наук, профессор, научный консультант лаборатории паразитарных зоонозов

Москва

Researcher ID: E-7165-2018

Scopus ID: 7004568180

Malysheva Natalya S., Doctor of Biological Sciences, Professor, Scientific Consultant of the Laboratory of Parasitic Zoonosis

Moscow

Researcher ID: E-7165-2018

Scopus ID: 7004568180

malyisheva@vniigis.ruЧасовскихО. В.ChasovskikhO. V.

Часовских Ольга Владимировна, кандидат ветеринарных наук, доцент, заведующая кафедрой морфологии, микробиологии, химии и фармакологии института биологии и ветеринарной медицины

Киров

Chasovskikh Olga V., Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor, Head of the Department of Morphology, Microbiology, Chemistry and Pharmacology, Institute of Biology and Veterinary Medicine

Kirov

beoli@mail.ruВсероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр – Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К. И. Скрябина и Я. Р. Коваленко Российской академии наук» (ВНИИП – фил. ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН); Вятский государственный агротехнологический университетРоссияAll-Russian Scientific Research Institute for Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plant – a branch of the Federal State Budget Scientific Institution "Federal Scientific Centre VIEV"; Vyatka State Agrotechnological UniversityRussian FederationВсероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр – Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К. И. Скрябина и Я. Р. Коваленко Российской академии наук» (ВНИИП – фил. ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН)РоссияAll-Russian Scientific Research Institute for Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plant – a branch of the Federal State Budget Scientific Institution "Federal Scientific Centre VIEV"Russian FederationВятский государственный агротехнологический университетРоссияVyatka State Agrotechnological UniversityRussian Federation202510062025192181189Copyright © Жданова О.Б., Успенский А.В., Русских А.И., Андреянов О.Н., Малышева Н.С., Часовских О.В., 20252025Жданова О.Б., Успенский А.В., Русских А.И., Андреянов О.Н., Малышева Н.С., Часовских О.В.Zhdanova O.B., Uspensky A.V., Russkikh A.I., Andreyanov O.N., Malysheva N.S., Chasovskikh O.V.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://vniigis.elpub.ru/jour/article/view/1307

Цель исследований – изучить распределение личинок Trichinella pseudospiralis в различных мышцах экспериментально инвазированных кур-несушек (Gallus gallus). Проанализировать имеющиеся методики для посмертной диагностики трихинеллеза методами трихинеллоскопии (КТ) и осадка после переваривания (пептолиз), вызванного T. pseudospiralis у птиц с уточнением расположения данных личинок в мышечной ткани и выявлением особо поражаемых групп мышц.

Материалы и методы

Материалы и методы. Методом аналогов сформированы опытные группы, которым вводили изолят личинок T. pseudospiralis в дозе 2 лич. /г массы тела. Личинки T. pseudospiralis, используемые для экспериментального заражения птицы, первоначально выделены из мышечной ткани диких Кошачьих, и поддерживались на лабораторных животных. С целью определения числа личинок T. pseudospiralis при распределении их в мышцах птиц через 4,5 мес. после экспериментального заражения кур-несушек опытной группы подвергли эвтаназии. В диагностических целях исследовали мышцы головы и пищевода, межреберные, ножки диафрагмы; применяли метод КТ с изготовлением фотографий на оборудовании Vision Bio, 2014. Отдельно исследовали мышцы груди и шеи птиц путем их препарирования. Объекты исследования микроскопировали при увеличении × 20 и × 80. Полученные данные обрабатывали с использованием стандартных пакетов программ MS Excel и Statgraphics.

Результаты и обсуждение

Результаты и обсуждение. Методом КТ обнаружено, что личинки T. рseudospiralis располагаются в мышцах у птиц крайне неоднородно. Это отмечали как при изготовлении срезов из одной локализации в пределах одной группы мышц, так и в различных группах исследуемых мышц. Наибольшее число личинок у кур-несушек обнаружено в мышцах головы и языка (3,70±0,50 и 5,20±0,30 экз.) в одном срезе, меньшее – в мышцах шеи и межреберных. Методы КТ и пептолиза ткани мышц в искусственном желудочном соке, используемые для постмортальной диагностики трихинеллеза, вызванного T. spiralis и T. pseudospiralis, достаточно надежны, позволяют обнаружить источники инвазии и предотвратить развитие опасного зооноза у человека. Данные методы можно применять для исследований на трихинеллез, в том числе, при наработке антигена, изучения чувствительности личинок к антигельминтикам и в качестве лабораторных моделей.

The purpose of the research is to study the distribution of Trichinella pseudospiralis larvae in various muscles of experimentally infected laying hens (Gallus gallus). To analyze the available methods for postmortem diagnostics of trichinellosis by trichinelloscopy (CT) and sedimentation after digestion (peptolysis) caused by T. pseudospiralis in birds with the clarified location of such larvae in muscle tissue and identified particularly affected muscle groups.

Materials and methods

Materials and methods. The analog method formed experimental groups that were given T. pseudospiralis larvae isolate at a dose of 2 specimens/g of body weight. T. pseudospiralis larvae used for experimental infection of the poultry were initially isolated from muscle tissue of wild felines and maintained in laboratory animals. To determine the number of T. pseudospiralis larvae distributed in the birds’ muscles at 4.5 months after the experimental infection, the laying hens from the experimental group were euthanatized. For diagnostic purposes, head and esophagus muscles, intercostal muscles, and crura of diaphragm were examined; the CT method was used with photographs taken with Vision Bio equipment, 2014. The birds’ pectoral muscles and the muscles of the neck were examined separately by dissection. The study objects were microscopically examined at ×20 and ×80 magnification. The obtained data were processed using standard MS Excel and Statgraphics packages.

Results and discussion

Results and discussion. The CT method revealed that T. рseudospiralis larvae were highly heterogeneously located in the birds’ muscles. This was noted when sections were made from one localization both within one muscle group and in different groups of the studied muscles. The greatest number of larvae was found in the head and the tongue muscles in the laying hens (3.70±0.50 and 5.20±0.30 specimens) in one section, and a smaller number in the muscles of the neck and intercostal muscles. CT and peptolysis of muscle tissue in artificial gastric juice used for postmortem diagnostics of trichinellosis caused by T. spiralis and T. рseudospiralis are quite reliable and allow for detecting infection sources and preventing dangerous zoonosis in humans. These methods can be used for trichinellosis research, including antigen production, studying the anthelmintic sensitivity in larvae, and as laboratory models.

трихинеллезприжизненная диагностикапосмертная диагностикаэкспериментальное заражениекуры-несушкиtrichinellosislife-time diagnosticspostmortem diagnosticsexperimental infectionlaying hensРабота выполнена в рамках Программы фундаментальных научных исследований в Российской Федерации на долгосрочный период (2021–2030 гг.), составляющей основу государственного задания № FGUG 2025-0001 без привлечения дополнительных источников финансирования.The study was performed within the Basic Scientific Research Program in the Russian Federation for the long-term period (2021-2030), which forms the basis of State Task No. FGUG-2025-0001 without attracting further sources of funding.ReferencesГаркави Б. Л. Трихинеллез, вызываемый Тrichinella pseudospiralis (морфология и биология возбудителя, эпизоотология и эпидемиология, диагностика, меры борьбы и профилактика) // Российский паразитологический журнал. 2007. № 2. С. 35-116.Garkavi B. L. Trichinellosis caused by Trichinella pseudospiralis (pathogen morphology and biology, epizootology and epidemiology, diagnostics, control measures, and prevention). Rossiyskiy parazitologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Parasitology. 2007; 2: 35-116. (In Russ.)Жданова О. Б., Ашихмин С. П., Окулова И. И., Бельтюкова З. Н. Распространенность T. spiralis и некоторые особенности профилактики трихинеллеза в Кировской области // Здоровье населения и среда обитания. 2017. № 1 (286). С. 46-49.Zhdanova O. B., Ashikhmin S. P., Okulova I. I., Beltyukova Z. N. T. spiralis prevalence and some features of the prevention of trichinellosis in the Kirov Region. Zdorov'ye naseleniya i sreda obitaniya = Population health and habitat. 2017; 1 (286): 46 49. (In Russ.)Жданова О. Б., Окулова И. И., Зарубин Б. Е., Домский И. А., Успенский А. В., Написанова Л. А., Россохин Д. В. Морфологические особенности и распределение личинок трихинелл в мышцах у рыси // Российский паразитологический журнал. 2021. Т. 15. № 2. С. 17-23. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2021-15-2Zhdanova O. B., Okulova I. I., Zarubin B. E., Domsky I. A., Uspensky A.V., Napisanova L.A., Rossokhin D. V. Morphological features and distribution of Trichinella larvae in the muscles of the lynx. Rossiyskiy parazitologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Parasitology. 2021; 15 (2): 17 23. (In Russ.) https://doi.org/10.31016/1998-8435 2021-15-2Мартусевич А. К., Жданова О. Б. Исследование зависимости кристаллогенной активности биосреды от интенсивности экспериментальной инвазии Тrichinella spiralis // Российский паразитологический журнал. 2013. № 2. С. 64-71.Martusevich A. K., Zhdanova O. B. Studying the dependence of crystallogenic activity of the biological media on the intensity of experimental Trichinella spiralis infection. Rossiyskiy parazitologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Parasitology. 2013; 2: 64-71. (In Russ.)Написанова Л. А., Жданова О. Б., Успенский А. В., Мартусевич А. К., Клюкина Е. С. К вопросу совершенствования технологий диагностики трихинеллеза у свиней // Свиноводство. 2020. № 6. С. 57-61. https://doi.org/10.37925/0039713X-2020-6-57-61Napisanova L. A., Zhdanova O. B., Uspensky A. V., Martusevich A. K., Klyukina E. S. The improvement of technologies for diagnosing trichinellosis in pigs. Svinovodstvo = Pig breeding. 2020; 6: 57 61. (In Russ.) https://doi.org/10.37925/0039713X-2020-6-57-61Одоевская И. М. Значение птиц в диссеминации личинок Тrichinella spp. в прибрежных и водных биоценозах // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2011 № 1. С. 12-16.Odoevskaya I. M. The significance of birds in Trichinella spp. larvae dissemination in coastal and aquatic biocenoses. Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnyye bolezni = Medical Parasitology and Parasitic Diseases. 2011; 1: 12-16. (In Russ.) 2025;19(2):181-189Одоевская И. М. О роли птиц в эпизоотологии трихинеллеза морских млекопитающих Арктического заполярья // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2010. № 3. С. 32-37.Odoevskaya I. M. On the role of birds in epizootology of trichinellosis in marine mammals in the Arctic Circle. Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnyye bolezni = Medical Parasitology and Parasitic Diseases. 2010; 3: 32-37. (In Russ.)Успенский А. В., Жданова О. Б., Андреянов О. Н., Написанова Л. А., Малышева Н. С. Трихинеллоскопия туш домашних и диких животных // Российский паразитологический журнал. 2021. Т. 15. № 3. С. 71-75. https://doi.org/10.31016/19988435-2021-15-3Uspensky A. V., Zhdanova O. B., Andreyanov O. N., Napisanova L. A., Malysheva N. S. Trichinelloscopy of carcasses from domestic and wild animals. Rossiyskiy parazitologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Parasitology. 2021; 15 (3): 71-75. (In Russ.) https://doi. org/10.31016/1998-8435-2021-15-3Успенский А. В., Арисов М. В., Гулюкин М. И., Скворцова Ф. К. Особенности ограничительных мероприятий при трихинеллезе // Российский паразитологический журнал. 2019. Т. 13. № 3. С. 88-92. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2019-13-3Uspensky A. V., Arisov M. V., Gulyukin M. I., Skvortsova F. K. Specifics of restrictive measures for trichinellosis. Rossiyskiy parazitologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Parasitology. 2019; 13 (3): 88 92. (In Russ.) https://doi.org/10.31016/1998-8435 2019-13-3Файнфельд И. А. Стресс и резистентность животных к паразитам. Благовещенск, 1988. 86 с.Finefeld I. A. Stress and resistance of animals to parasites. Blagoveshchensk, 1988; 86. (In Russ.) 11. Finefeld I. A. Trichinellosis. Birobidzhan: Far Eastern State Social and Humanitarian Academy, 2009; 96. (In Russ.)Файнфельд И. А. Трихинеллез. Биробиджан: Дальневосточная государственная социально гуманитарная академия, 2009. 96 с.Blair L. S., Campbell W. C. Reversibility of thiabendazole-induced sterilization of Trichinella spiralis. Wiadomości parazytologiczne. 1971; 17 (5): 641-644.Blair L. S., Campbell W. C. Reversibility of thiabendazole-induced sterilization of Trichinella spiralis. Wiadomości parazytologiczne, 1971; 17 (5): 641-644.Campbell W. C., Blair L. S. Chemotherapy of Trichinella spiralis Infections (a review). Experimental Parasitology. 1974; 35 (2): 304-334.Campbell W. C., Blair L. S. Chemotherapy of Trichinella spiralis Infections (a review). Experimental Parasitology, 1974; 35 (2): 304-334.Finefield I. A. The effect of helmatac on different species of Trichinella. Abstracts of papers, Third International Conference on Trichinellosis. Miami Beach, Florida, 1972; 71-72. 15. Finefield I. A. The effect thiabendazole in human trichinellosis. Abstracts of papers, Forth International Conference on Trichinellosis. Poznan, 1976; 16-17.Finefield I. A. The effect of helmatac on different species of Trichinella. Abstracts of papers, Third International Conference on Trichinellosis. Miami Beach, Florida, 1972; 71-72.Kim C. W., Pawłowski Z. S. Trichinellosis: proceedings of the Fourth International Conference on Trichinellosis. Poznań, Poland. 1976; 519-523.Finefield I. A. The effect thiabendazole in human trichinellosis. Abstracts of papers, Forth International Conference on Trichinellosis. Poznan, 1976; 16-17.Goździk K., Cabaj W., Odoevskaya I. M., Movse- syan S. O. Мolecular identification of trichinella isolates from wildlife animals of the Russian Аrctic territories. Helminthologia. 2017; 54 (1): 11-16.Kim C. W., Pawłowski Z. S. Trichinellosis: proceedings of the Fourth International Conference on Trichinellosis, Poznań, Poland. 1976; 519-523.Mestecky J. The common mucosal immune system and current strategies for induction of immune responses in external secretions. Journal of Clinical Immunology. 1987; 7: 265–276.Goździk K., Cabaj W., Odoevskaya I. M., Movsesyan S. O. Мolecular identification of trichinella isolates from wildlife animals of the Russian Аrctic territories. Helminthologia. 2017; 54 (1): 11-16.Goździk K., Cabaj W., Odoevskaya I. M., Movsesyan S. O. Мolecular identification of trichinella isolates from wildlife animals of the Russian Аrctic territories. Helminthologia. 2017; 54 (1): 11-16.Mestecky J. The common mucosal immune system and current strategies for induction of immune responses in external secretions. Journal of Clinical Immunology. 1987; 7: 265–276.Mestecky J. The common mucosal immune system and current strategies for induction of immune responses in external secretions. Journal of Clinical Immunology. 1987; 7: 265–276.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.